BỘ GIÁO DỤC VÀ ĐÀO TẠO VIỆN HÀN LÂM KHOA HỌC VÀ CÔNG NGHỆ VIỆT NAM HỌC VIỆN KHOA HỌC VÀ CÔNG NGHỆ - ận Lu Nguyễn Võ Kỳ Duyên n vă th ạc NGHIÊN CỨU TẠO NƯỚC HOẠT HÓA PLASMA VÀ ỨNG DỤNG NÂNG CAO TỶ LỆ NẢY MẦM HẠT VÀ TĂNG sỹ TRƯỞNG CỦA XÀ LÁCH XOĂN (LACTUCA CAPITATA) nh Si c họ LUẬN VĂN THẠC SĨ: SINH HỌC THỰC NGHIỆM TP Hồ Chí Minh - 2020 BỘ GIÁO DỤC VÀ ĐÀO TẠO VIỆN HÀN LÂM KHOA HỌC VÀ CÔNG NGHỆ VIỆT NAM HỌC VIỆN KHOA HỌC VÀ CÔNG NGHỆ - ận Lu Nguyễn Võ Kỳ Duyên vă n NGHIÊN CỨU TẠO NƯỚC HOẠT HÓA PLASMA VÀ ỨNG DỤNG NÂNG CAO TỶ LỆ NẢY MẦM HẠT VÀ TĂNG TRƯỞNG CỦA XÀ LÁCH XOĂN (LACTUCA CAPITATA) ạc th sỹ Si c họ Mã số: 42 01 14 nh Chuyên ngành: Sinh học thực nghiệm LUẬN VĂN THẠC SĨ SINH HỌC THỰC NGHIỆM NGƯỜI HƯỚNG DẪN KHOA HỌC: Hướng dẫn 1: TS Phạm Hữu Thiện Hướng dẫn 2: TS Nguyễn Hoàng Dũng TP Hồ Chí Minh - 2020 i Lời cam đoan Tôi xin cam đoan đề tài luận văn thạc sĩ: “Nghiên cứu tạo nước hoạt hóa plasma ứng dụng nâng cao tỷ lệ nảy mầm hạt tăng trưởng xà lách xoăn (Lactuca capitata)” thực với đồng ý hướng dẫn nhiệt tình thầy TS Phạm Hữu Thiện thầy TS Nguyễn Hồng Dũng Đây khơng phải chép cá nhân, tổ chức Các kết thực nghiệm, số liệu, nguồn thông tin luận văn tơi tiến hành, trích dẫn, tính tốn đánh giá Lu Tơi xin chịu hồn tồn trách nhiệm nội dung mà tơi trình bày luận văn ận TP Hồ Chí Minh, ngày 20 tháng 10 năm 2020 n vă Người cam đoan ạc th sỹ Nguyễn Võ Kỳ Duyên nh Si c họ ii Lời cảm ơn Em chân thành bày tỏ lòng biết ơn sâu sắc đến: Thầy TS Phạm Hữu Thiện tận tình hướng dẫn, bồi dưỡng kiến thức tạo điều kiện tốt để em hoàn thành luận văn Thầy TS Nguyễn Hoàng Dũng giảng dạy, tận tình hướng dẫn, truyền đạt kinh nghiệm ln động viên giúp đỡ em q trình học tập, làm luận văn ận Lu Giáo sư Ahmed KHACEF - Đại học Orleans Th.S Thân Quốc An Hạ - Phó phịng Kỹ thuật Vật lý thuộc Viện Khoa học Vật liệu Ứng dụng hỗ trợ nhiều mặt chun mơn thiết bị thí nghiệm cho em hoàn thành luận văn n vă Học viện Khoa học Cơng nghệ, đặc biệt Phịng Đào tạo, Khoa Công nghệ Sinh học tạo điều kiện thuận lợi cho em suốt thời gian học tập làm luận văn th ạc Các Thầy, Cô hội đồng dành thời gian đọc đóng góp nhiều ý kiến hữu ích cho luận văn em sỹ nh Si Ban lãnh đạo Viện Khoa học Vật liệu Ứng dụng Viện Sinh học Nhiệt đới giúp em có điều kiện sở vật chất thời gian để thực thí nghiệm luận văn họ c Các anh chị bạn chuyên ngành Sinh học thực nghiệm khóa 2018B, anh chị em đồng nghiệp nhóm nghiên cứu plasma nơng nghiệp phịng Kỹ thuật Vật Lý - Viện Khoa học Vật liệu Ứng dụng động viên, giúp đỡ thời gian học tập, làm luận văn Cuối cùng, xin chân thành cảm ơn ba mẹ em Hạnh Duyên yêu thương, tạo điều kiện cho học tập Nguyễn Võ Kỳ Duyên iii Mục lục Trang Lời cam đoan i Lời cảm ơn ii Mục lục iii Danh mục ký hiệu chữ viết tắt v Danh mục hình vẽ, đồ thị vi Lu MỞ ĐẦU ận CHƯƠNG TỔNG QUAN n vă 1.1 TỔNG QUAN VỀ XÀ LÁCH XOĂN VÀ SỰ NẢY MẦM VÀ TĂNG TRƯỞNG HẠT ạc th 1.1.1 Xà lách xoăn 1.1.2 Sự nảy mầm hạt sỹ 1.1.3 Sự tăng trưởng giai đoạn đầu hạt 10 Si nh 1.2 TỔNG QUAN VỀ NƯỚC HOẠT HÓA PLASMA 11 1.2.1 Giới thiệu chung plasma nước hoạt hóa plasma 11 họ c 1.2.2 Chế tạo nước hoạt hóa plasma 11 1.2.3 Sự tạo thành các chất có chứa gốc oxy tự (ROS) chất có chứa gốc nitơ tự (RNS) có nước hoạt hóa plasma 12 1.2.4 Vai trị nước hoạt hóa plasma nảy mầm hạt 14 1.2.5 Vai trò nước hoạt hóa plasma tăng trưởng giai đoạn đầu hạt 19 1.2.6 Tình hình nghiên cứu ngồi nước 19 CHƯƠNG VẬT LIỆU VÀ PHƯƠNG PHÁP 22 2.1 THỜI GIAN VÀ ĐỊA ĐIỂM NGHIÊN CỨU 22 iv 2.2 NGUYÊN VẬT LIỆU 22 2.3 PHƯƠNG PHÁP NGHIÊN CỨU 23 2.3.1 Điều chế xác định tính chất lý hóa nước hoạt hóa plasma 23 2.3.2 Sự ảnh hưởng nước hoạt hóa plasma đến trình nảy mầm hạt 24 2.3.3 Sự ảnh hưởng nước hoạt hóa plasma đến q trình tăng trưởng sớm hạt 26 2.3.4 Phương pháp xử lý số liệu 27 CHƯƠNG KẾT QUẢ VÀ THẢO LUẬN 28 Lu 3.1 TÍNH CHẤT LÝ HĨA CỦA NƯỚC HOẠT HĨA PLASMA 28 ận 3.2 SỰ ẢNH HƯỞNG CỦA NƯỚC HOẠT HĨA PLASMA ĐẾN Q TRÌNH NẢY MẦM HẠT 33 vă n 3.2.1 Kết chụp SEM 33 th 3.2.2 Trọng lượng nghìn hạt 35 ạc 3.2.3 Tỷ lệ nảy mầm hạt 36 sỹ nh Si 3.3 SỰ ẢNH HƯỞNG CỦA NƯỚC HOẠT HĨA PLASMA ĐẾN Q TRÌNH TĂNG TRƯỞNG TRONG GIAI ĐOẠN SỚM CỦA HẠT 39 3.3.1 Chiều cao thân, chiều dài rễ 39 họ 3.3.2 Trọng lượng khô/ trọng lượng tươi 43 c 3.3.3 Diện tích 44 3.3.4 Nồng độ chlorophyll 45 KẾT LUẬN VÀ KIẾN NGHỊ 47 TÀI LIỆU THAM KHẢO 48 v Danh mục ký hiệu chữ viết tắt ABA: Abscisic acid Axit abxixic DBD: Dielectric barrier discharge Phóng điện qua lớp điện mơi DNA: Deoxyribonucleic acid Axit deoxyribonucleic GA: Gibberellic acid Axit gibberellic PAW: Plasma activated water Nước hoạt hóa plasma Lu Ribonucleic acid Axit ribonucleic RNS : Reactive nitrogen species Các chất chứa ni-tơ có hoạt tính ROS : Reactive oxygen species SEM: Scanning Electron Microscope Kính hiển vi điện tử quét ận RNA: n vă Các chất chứa oxy có hoạt tính ạc th sỹ nh Si c họ vi Danh mục hình vẽ, đồ thị Trang Hình 1.1 Hình ảnh minh họa hình dáng rễ (s), thân (b), (c) hoa (d) xà lách xoăn Hình 1.2 Sự hình thành phân giải NO thực vật 14 Hình 1.3 Q trình đồng hóa Nitơ thực vật 16 Hình 2.1: Hoa chứa hạt xà lách xoăn ………………………………… .21 Hình 2.2: Sơ đồ chế tạo PAW (trái) hình vẽ minh họa sơ đồ (phải) .22 Lu ận Hình 2.3: Các bước tiến hành theo dõi ảnh hưởng PAW nảy mầm tăng trưởng hạt xà lách xoăn 27 vă n Hình 3.1: Sự thay đổi nồng độ NO3-, H2O2, O3- nước thay đổi thời gian hoạt hóa plasma …………………… …………………………………27 th ạc Hình 3.2: Sự thay đổi độ dẫn điện nước tăng thời gian hoạt hóa plasma 31 sỹ Hình 3.3: Sự thay đổi pH nước tăng thời gian hoạt hóa plasma 32 Si nh Hình 3.4: pH PAW 60 phút hoạt hóa plasma…………… ………32 c họ Hình 3.5: Ảnh SEM bề mặt hạt sau ngâm với mẫu nước khác 34 Hình 3.6: Trọng lượng nghìn hạt mẫu sau ngâm với nước cất mẫu nước hoạt hóa plasma thời gian khác 35 Hình 3.7: Tỷ lệ nảy mầm hạt (Rg) ngày đầu…………………………36 Hình 3.8: Các số nảy mầm hạt vào ngày thứ 38 Hình 3.9: Sự hình thành từ hạt ngâm với P15 sau (a) (b), (c) 24 (d)………………………………………………………… 39 Hình 3.10: Chiều dài phôi sau 24 theo dõi 40 Hình 3.11: Chiều chiều cao thân chiều dài rễ sau ngày theo dõi 41 vii Hình 3.12: Hình ảnh mẫu sau ngày theo dõi 42 Hình 3.13 : Hình dạng rễ P5 (trái) P30 (phải) sau ngày theo dõi 42 Hình 3.14: Tỷ lệ trọng lượng khô trọng lượng tươi sau ngày theo dõi …………………………………………………………………………… 43 Hình 3.15: Diện tích sau ngày theo dõi 44 Hình 3.16: Ảnh chụp mẫu sau ngày theo dõi …………………… 44 Hình 3.17: Nồng độ chlorophyll đo sau ngày theo dõi 45 ận Lu n vă ạc th sỹ nh Si c họ MỞ ĐẦU Đặt vấn đề ận Lu Hiện nay, nhà khoa học nghiên cứu nhiều cách để kích thích hạt nảy mầm nhanh sử dụng từ trường [1], xử lý siêu âm [2] sử dụng ô-zôn, tia UV hay plasma nguội hay nước hoạt hóa plasma (Plasma activated water – PAW) [3] Ở phương pháp có ưu, nhược điểm khác Tuy nhiên, nước hoạt hóa plasma (PAW) có nhiều ưu điểm thân thiện với mơi trường, thời gian xử lí ngắn, tiết kiệm lượng, không gây hại cho hạt, thực vật sức khỏe người Chính mà năm gần việc áp dụng PAW nông nghiệp, cụ thể kích thích nảy mầm vầ tăng trưởng trở thành xu hướng nghiên cứu nhà khoa học thể giới Mặt khác, hiệu kích thích nảy mầm tăng trưởng thực vật PAW phụ thuộc vào thành phần nồng độ chất có PAW, việc nghiên cứu chế tạo PAW để ứng dụng tăng trưởng thực vật hướng nghiên cứu theo kịp xu hướng giới n vă th ạc Xà lách xoăn (Lactuca capitata) chọn đối tượng nghiên cứu loại thực vật có: độ nhạy hạt giống cao, tốc độ mầm nhanh, tăng trưởng tuyến tính, khơng nhạy cảm với khác biệt pH phạm vi rộng [4] Ngồi ra, xà lách xoăn cịn loại rau ăn sống có giá trị kinh tế cao sỹ nh Si c họ Chính luận điểm mà đề tài “Nghiên cứu tạo nước hoạt hoá plasma ứng dụng nâng cao tỷ lệ nảy mầm hạt tăng trưởng xà lách xoăn (Lactuca capitata)” hứa hẹn có hiệu kinh tế mà đảm bảo an toàn cho trồng, người, vật ni, mơi trường áp dụng vào thực tiễn với quy mô lớn Mục tiêu đề tài Tối ưu hóa điều kiện chế tạo nước hoạt hóa plasma đánh giá hoạt tính nước hoạt hóa plasma nâng cao tỷ lệ nảy mầm hạt tăng trưởng giai đoạn sớm xà lách xoăn (Lactuca capitata) Đối tượng phạm vi nghiên cứu Đối tượng nghiên cứu: Nước hoạt hóa plasma 42 Hình 3.12: Hình ảnh mẫu sau ngày theo dõi ận Lu Trong thể sống, H2O2 phản ứng với chất nội sinh tế bào tạo kết tủa nâu rễ [83] Khi so sánh hình thái rễ P5 P30 ta thấy rễ xử lý PAW 30 phút có cường độ vết H2O2 (màu nâu đen xuất chóp rễ) cao so với xử lý PAW 30 phút (Hình 3.12) Điều chứng tỏ lượng mẫu P30 dư so với mức cần thiết n vă ạc th sỹ nh Si c họ Hình 3.13 : Hình dạng rễ P5 (trái) P30 (phải) sau ngày theo dõi (độ phóng đại 40X) Sau xuất từ vỏ áo hạt bắt đầu mọc rễ lá, nguồn dự trữ có sẵn hạt thường cạn nên lúc quang hợp cung cấp lượng cần thiết để tiếp tục phát triển Lúc cần nguồn nước, dưỡng chất, ánh sáng liên tục Trong đó, ROS RNS kiểm sốt nhiều trình khác thực vật, bao gồm tăng trưởng, phát triển [61] 43 ận Lu Nhiều nghiên cứu cho thấy H2O2 tạo protein liên quan đến tín hiệu phát triển thực vật giúp kéo dài phân chia tế bào kiểm soát chu kỳ tế bào [61] Khi H2O2 hấp thu vào tế bào sản sinh O2 cho trình hô hấp tế bào ty thể trình trao đổi chất tốt [84] Tuy nhiên nồng độ H2O2 cao gây tổn thương DNA dẫn đến đứt gãy sợi đôi gen ảnh hưởng đến khả tồn tế bào [85], cho nguyên nhân gây nên giảm suất Mẫu P15 có nồng độ H2O2 phù hợp cho phát triển giúp cao, cứng cáp, rễ phát triển nhanh, mọc nhiều rễ phụ giúp hút chất dinh dưỡng quang hợp tốt Trong mẫu P30 chứa nồng độ H2O2 cao gây biểu kiểu hình khác xa so với contol Điều phù hợp với kết vừa đề cập mục 3.3.1 kết tính chất hóa lý PAW mục 3.1 vă 3.3.2 Trọng lượng khô/ trọng lượng tươi n Trọng lượng tươi trọng lượng khô tiêu quan trọng để đánh giá trình sinh trưởng Hình 3.14 thể tỷ lệ trọng lượng khô trọng lượng tươi sau ngày theo dõi hạt xử lý nước cất mẫu nước hoạt hóa plasma thời gian khác ạc th sỹ nh Si c họ Hình 3.14: Tỷ lệ trọng lượng khô trọng lượng tươi sau ngày theo dõi Tương tự kết trước, trường hợp P15 cho hạt có trọng lượng nặng là, Trọng tươi trọng lượng khơ nói lên kết 44 q trình sinh lý diễn cây, đặc biệt trình quang hợp tạo chất hữu Điều chứng tỏ hạt P15 phát triển với cường đọ cao mẫu lại 3.3.3 Diện tích Việc đo diện tích xác định nồng độ chlorophyll để khẳng định lại hiệu nâng cao cường độ quang hợp nhờ nước hoạt hóa plasma Các kết trình bày hình 3.15 – 3.17 ận Lu n vă ạc th sỹ nh Si c họ Hình 3.15: Diện tích sau ngày theo dõi Hình 3.16: Ảnh chụp mẫu sau ngày theo dõi 45 Dựa vào hình 3.15 3.16, ta thấy mẫu C, P5, P30 có màu vàng nhạt diện tích trung bình bé mẫu P10 đến P25 xanh tươi thể phát triển tốt Đặt biệt mẫu P15, mẫu xanh đậm hẳn so với mẫu lại 3.3.4 Nồng độ chlorophyll Chlorophyll thể phần cường độ hơ hấp cây, qua ta xác định mức tăng trưởng Nồng độ chlorophyll hạt ngâm với P15 lại tiếp tục thể hiệu vượt trội so với mẫu khác (hình 3.17) Lu Nồng độ chlorophyll mẫu ận n vă ạc th sỹ nh Si C, µg/l P5 P10 P15 P20 Tên mẫu Clorophyll a Clorophyll b P25 c C họ P30 Hình 3.17: Nồng độ chlorophyll đo sau ngày theo dõi Những kết thời gian hoạt hóa plasma 15 phút không gây tổn hại đến nảy mầm phát triển giai đoạn sớm thực vật việc tưới P15 cải thiện khả hô hấp, phát triển giai đoạn sớm Thời gian hoạt hóa plasma lâu (30 phút) làm PAW chứa nhiều ROS RNS gây căng thẳng gây độc cho thực vật 46 Điều cho thấy việc sử dụng P15 tạo lượng ROS RNS kích hoạt phát triển thực vật không gây độc hại cho chúng ận Lu n vă ạc th sỹ nh Si c họ 47 KẾT LUẬN VÀ KIẾN NGHỊ KẾT LUẬN Từ kết đạt được, có số kết luận sau: - Nước hoạt hóa plasma thời gian khác có đặc tính lý hóa khác thể rõ thông qua độ dẫn điện pH dung dịch; - Nước hoạt hóa plasma có chứa tác nhân oxy hóa nên làm thay đổi cấu trúc bề mặt hạt, qua làm thay đổi tỷ lệ nảy mầm tốc độ tăng trưởng hạt; ận Lu - Kết tỷ lệ nảy mầm, số nảy mầm, số sinh lực trọng lượng nghìn hạt hạt ngâm với loại PAW thể thời gian hoạt hóa plasma tốt 15 phút (mẫu P15) có hiệu tốt cho nảy mầm hạt; vă n - Các tưới P15 ngày đầu cho số tăng trưởng chiều cao thân, chiều dài rễ, trọng lượng tươi, trọng lượng khơ, diện tích lá, nồng độ chlorophyll,… tốt so với trường hợp lại ạc th sỹ nh Si - Thời gian hoạt hóa plasma 15 với lượng H2O2 NO3- 37 ppm 40 ppm phù hợp để sử dụng mục đích kích thích nảy mầm tăng trưởng xà lách xoăn giai đoạn đầu c họ KIẾN NGHỊ Triển khai thử nghiệm hiệu nước hoạt hóa plasma quy mô in vivo, trồng đất đánh giá tương tác PAW với thành phần đất Đồng thời tiếp tục nghiên cứu định tính định lượng thành phần khơng bền có PAW xác định vai trò chúng nảy mầm phát triển hạt 48 TÀI LIỆU THAM KHẢO ận Lu Ananta V, Shantha N, 2010, Effect on germination and early growth characteristics in sunflower (Helianthus annuus) seeds exposed to static magnetic field, Journal of Plant Physiology, volume 167, Issue 2 Yaldagard, M, Mortazavi, S, Tabatabaie, F, 2007, The effectiveness of ultrasound treatment on the germination stimulation of barley seed and its alpha-amylase activity, World Acad, Sci, Eng, Technol, 34, 154–157 Tkalec, M, Malaric´, K, Pavlica, M, Pevalek-Kozlina, B, Vidakovic´Cifrek, Zˇ, 2009, Effects of radiofrequency electromagnetic fields on seed germination and root meristematic cells of Allium cepa L, Mutat, Res, Genet, Toxicol Environ Mutagen, 672, 76–81 Amanda O,A, Maria A, P, da Silva, Alison H, de Oliveira, Marcos A, F, dos Santos, Lilian C, S, Vandesmet, Maria E, M, G, Helen K, R, C, C, Hemerson S, L, Ana C, A, M, M, Natália C, da Costa, 2017, Allelopathic Effects of Psychotria viridis Ruiz & Pavon on the Germination and Initial Growth of Lactuca sativa L, Journal of Agricultural Science; Vol, 9, No, Lê Thị Khánh, 2009, Bài giảng rau, NXB Trường đại học nông lâm Huế Nazri, N.A.A.M, Ahmat, N, Adnan A, Mohamad, S.A.S, Ruzaina, S.A.S, 2011, In vitro antibacterial and radical scavenging activities of Malaysian table salad, Afr, J, Biotechnol, 10 (30), 5728–5735 Nomaani, R.S.S.A, Hossain, M.A, Weli, A.M, Al-Riyami, Q, Al-Sabahi, J.N, 2013A, Chemical composition of essential oils and in vitro antioxidant activity of fresh and dry leaves crude extracts of medicinal plant of Lactuca sativa L, native to Sultanate of Oman, Asian Pac, J, Trop, Biomed, (5), 353–357 Nomaani, R.S.S.A, Hossain, M.A, Weli, A.M, Al-Riyami, Q, Al-Sabahi, J.N, 2013B, Chemical composition of essential oils and in vitro antioxidant activity of fresh and dry leaves crude extracts of medicinal plant of Lactuca sativa L, native to Sultanate of Oman, Asian Pac, J, Trop, Biomed, (5), 353–357 Garg, M, Garg, C, Mukherjee, P,K, Suresh, B, 2004, Antioxidant potential of Lactuca sativa, Anc Sci, Life 24 (1), 1–4 n vă ạc th sỹ nh Si c họ 49 ận Lu 10 Edziri, H.L, Smach, M.A, Ammar, S, Mahjoub, M.A, Mighri, Z, Aouni M, 2011, Antioxidant, antibacterial, and antiviral effects of Lactuca sativa extracts, Ind Crops Prod, 34 (1), 1182–1185 11.Gridling, M, Popescu, R, Kopp, B, Wagner, K, Krenn, L, Krupitza, G, 2010, Anti-leukaemic effects of twoextract types of Lactuca sativa correlate with the activation of Chk2, induction of p21, downregulation of cyclin D1 and acetylation of alpha-tubulin, Oncol Rep, 23 (4), 1145–1151 12.Sayyah, M.Hadidi, N Kamalinejad, M, 2004, Analgesic and antiinflammatory activity of Lactuca sativa seed extract in rats, J, Ethnopharmacol, 92, 325–329 13.Ismail, H.Mirza, B, 2015, Evaluation of analgesic, anti-inflammatory, antidepressant and anti-coagulant properties of Lactuca sativa (CV, Grand Rapids) plant tissues and cell suspension in rats, BMC Complement, Altern, Med, 15, 199 14.Ahangarpour, A Oroojan, A.A, Radan, M, 2014, Effect of aqueous and hydro-alcoholic extracts of lettuce (Lactuca sativa) seed on testosterone level and spermatogenesis in NMRI mice Iran, J, Reprod, Med, 12 (1), 65– 72 15 Li et al, 2012, Hydrogen sulfide is a mediator in H2O2-induced seed germination in Jatropha Curcas, Acta Physiologiae Plantarum 34, 22072213 16 El-Araby et al, 2006, Hormone and phenol levels during germination and osmopriming of tomato seeds, and associated variations in protein patterns and anatomical seed features, Acta Agronomica Hungarica, pp 441-457 17 Bailly, Christophe, Bogatek-Leszczynska, Renata, Cụme, Daniel, Corbineau, Franỗoise, 2002, Changes in activities of antioxidant enzymes and lipoxygenase during growth of sunflower seedlings from seeds of different vigour, Seed Science Research, 12, 47–55 18 Hand Jawad Kadiem, Hawrez Ali Nadir, 2019, Impact of seeds soaking use some microelements on seedling growth of cucumber (Cucumis sativus L,), Journal Of Kirkuk University For Agricultural Sciences, 2018, p, 25-29 n vă ạc th sỹ nh Si c họ 50 ận Lu 19 Rafika Yacoubi, Claudette Job, Maya Belghazi, Wided Chaibi Dominique Job, 2011, Toward Characterizing Seed Vigor in Alfalfa Through Proteomic Analysis of Germination and Priming, J, Proteome Res, 2011, 10, 9, 3891–3903 20 Yong-Ping Gao, Peta C, Bonham-Smith, Lawrence V, Gusta, 1999, The role of peroxiredoxin antioxidant and calmodulin in ABA-primed seeds of Brassica napusexposed to abiotic sresses during germination, Journal of Planty Physiology, 2002, pp, 951-958 21 Karine Gallardo , Claudette Job , Steven PC Groot , Magda Puype , Hans Demol, Joël Vandekerckhove , Dominique Job, 2001, Proteomic Analysis of Arabidopsis Seed germination and priming, Plant physiology, pp 126,2,835 22 Bùi Trang Việt, 1992, Tìm hiểu hoạt động chất điều hòa sinh trưởng thực vật thiên nhiên tượng rụng “bông” “trái non” Tiêu (Piper nigrum L,), Tập san Khoa học Đại học tổng hợp Tp, HCM 1, tr,155-165 23 Nogogaki H, Bassel G,W, and Bewley J,D, 2010, Germination - still a mystery, Plant science, Elsevier 179, pp,574-581 24 Bewley J,D, 1997, Seed germination and Dormancy, The Plant cell 9, pp,1055- 1066 25 Daussant J, Miyata S, Mitsui T, and Akazawa T, 1982, Enzymic mechanism of starch breakdown in germinating rice seeds, Plant physiology 71, pp,8895 26 Mai Trần Ngọc Tiếng, 2001, Thực vật cấp cao, Nxb Đại học Quốc gia Tp, HCM, Tp,HCM 27 Hoàng Minh Tấn, Vũ Quang Sáng, Nguyễn Kim Thanh, 2006, Giáo trình Sinh lý thực vật, NXB Đại học sư phạm, Tp, HCM 28 Nguyễn Như Khanh, 1994, Hoạt tính auxin cytokinin mạ lúa NN8 ảnh hưởng nhiệt độ thấp GA3, Tạp chí Sinh học, 16(3), 35-37 n vă ạc th sỹ nh Si c họ 51 ận Lu 29 Yamaguchi S, Kamiya Y, and Sun T.P, 2001, Distinct cell-specific expresstion pattern of early and late gibberellin biosynthetic genes during Arapidopsis seed germination, The Plant Journal 28, pp,443-453 30.Nguyễn Ngọc Đệ, 2009, Giáo trình lúa, Nxb Đại học Quốc gia Tp, HCM, Tp,HCM 31.Tibor Stola´rik1, Ma´ria Henselova´, Michal Martinka, Ondrˇej Nova´k, Anna Zahoranova´, Mirko Cˇerna´k, 2015, Effect of Low-Temperature Plasma on the Structure of Seeds, Growth and Metabolism of Endogenous Phytohormones in Pea (Pisum sativum L,), Plasma Chem Plasma Process 32 Bruggeman P, Leys C, 2009, Non-thermal plasmas in and in contact with liquids, J Phys D Appl Phys 42:053001 33 Brisset J-L, Hnatiuc E ,2012, Peroxynitrite: A Re-examination of the Chemical Properties of Non-thermal Discharges Buning in Air Over Aqueous Solutions, Plasma Chem Plasma Process 32:655-674 34 Locke B R, Sato M, Sunka P, Hoffman M R, Chang J –S, 2006, Electrohydraulic Discharge and Nonthermal Plasma for Water Treatment, Ind Eng Chem Res 45:882-905 35 Starikovskiy A, Yang Y, Cho Y I, Fridman A , 2011, Non-equilibrium plasma in liquid water: dynamics of generation and quenching, Plasma Chem Plasma Process 20:0240003 36 Machala Z, Tarabova B, Hensel, Spetlikova E, Sikurova L, Lukes P, 2013, Formation of ROS and RNS in Water Electro-Sprayed through Transient Spark Discharge in Air and their Bactericidal Effects, Plasma Process Polym 10:649- 659 37 Stoffels E, Sakiyama Y, Graves DB, 2008, Cold Atmospheric Plasma: Charges Species and Their Interactions With Cells and Tissues, IEEE Trans Plasma Sci 38.Machala z, Chládeková L Pelach M, 2010, Plasma agents in biodecontamination by de discharges in atmospheric air, J Phys D: Appl Phys 43:222001 n vă ạc th sỹ nh Si c họ 52 ận Lu 39.Pavlovich M J, Chang H-W, Sakiyama Y, Clark DS, Graves DB, 2013, Ozone correlates with antibacterial effects from indirect air dielectric barrier discharge irtatment of water, J Phy D: Appl Phys 46:145202 40.Pavlovich M J, Chen Z, Sakiyama Y, Clark D S, Graves D B, 2013, Effect of Discharge Parameters and Surface Characteristics on Ambient-Gas Plasma Disinfection, Plasma Process Polym 10:69-76 41.Laroussi M, 2005, Low Temperature Plasma-Based Sterilization: Overview and State-of-the-Art, Plasma Process Polym 2:391-400 42.Locke BR, 2012, Environmental Applications of Electrical Discharge Plasma with Liquid Water: A Mini Review, Inter J Plasma Env Sci Technol 6:3 43 Graham W G, KR Stalder, 2011, Plasmas in liquids and some of their applications in nanoscience, J Phys D Appl Phys 44:174037 44 Takaki K, Takahata J, Watanabe S, Satta N, Yamada 0, Fujio T, 2013, Improvements in plant growth rate using underwater discharge J Phys Conf Ser 418:012140 45 Park D P, Davis K, Gilani S, Alonzo C-A, Dobrynin D, Friedman G, 2013, Reactive nitrogen species produced in water by non-equilibrium plasma increase plant growth rate and nutritional yield, Curr Appl Phys 13:19-29 46 Lindsay A, Byrms B, King W, Andhvarapou A, Fields J, Knappe D, 2014, Fertilization of Radishes, Tomatoes, and Marigolds Using a Large-Volume Atmospheric Glow Discharge, Plasma Chem Plasma Process 34:1271-1290 47 Ikawa S, Kitano K, Hamaguchi S, 2010, Effects of pH on Bacterial Inactivation in Aqucous Solutions due to Low-Temperature Atmospheric Pressure Plasma Application, Plasma Process Polym 7:33-42 48 Foreman J, Demidchik V, Bothwell J H F, Mylona P, Miedema H, Torres MA, 2003, Reactive oxygen species produced by NADPH oxidase regulate plant cell growth, Nature 422:442-446 49.Halliwell B, 2006, Reactive species and antioxidants, Redox biology is a fundamental theme of aerobic life, Plant Physiol 141:312-22 50.Barba-Espin G, Diaz-Vivancos P, Clemente-Moreno M J, Albacete A, Faize L, Faize M, 2010, Interaction between hydrogen peroxide and plant n vă ạc th sỹ nh Si c họ 53 ận Lu hormones during germination and the early growth of pea seedlings, Plant Cell Environ 33:981-94 51.Foyer C H, Noctor G, 2009, Redox Regulation in Photosynthetic Organisms: Signaling, Acclimation, and Practical Implications, Antiox & Redox Signaling 11:861-905 52 Wilson I D, Neill SJ, Hancock JT, 2008, Nitric oxide synthesis and signalling in plants, Plant Cell Env 31:622-631 53.Gutteridge J M, Halliwell B, 2010, Antioxidants: Molecules, medicines, and myths, Biochem Biophys Res Commun 393:561-4 54 Dunand C, Crèvecocur M, Penel C, 2007, Distribution of superoxide and hydrogen peroxide in Arabidopsis root and their influence on root development: possible interaction with peroxidases, New Phyto 174,332341 55 Caliskan M, Cuming A C, 1998, Spatial specificity of H:Or-generating oxalate oxidase gene expression during wheat embryo germination, The Plant Journal 15:165-171 56 Federico R, Angelini R, 1986, Occurrence I diamine exidase in the apoplast of pea epicotyls, Planta 167:300-302 57.Wendehenne D, Dumer J, Klessig DF, 2004, Nitric oxide: a new player in plant signalling and defence responses, Curr Opin Plant Biol 7:449-5s 58.Mur L A, Mandon J, Persijn S, Cristescu S M, Moshkov 1E, Novikova G V, 2013, Nitric oxide in plants; an assessment of the current state of knowledge, AoB Plants 5:052 59 Liszkay A, van der Zalm E, Schopfer P, 2004, Production of reactive oxygen intermediates (O2, H2O2, and OH) by maize roots and their role in wall loosening and clongation growth, Plant Physiol 136:3114-3123 60.R Zhou, R Zhou, X Zhang, J Zhuang, S Yang, K Bazaka, K.K Ostrikov, Scientific Reports, (2016) 32603 61.A.J Miller, X Fan, M Orsel, S.J Smith, D.M Wells, J Exp Bot., 58 (2007) 2297-2306 n vă ạc th sỹ nh Si c họ 54 ận Lu 62 A Krapp, L.C David, C Chardin, T Girin, A Marmagne, A.-S Leprince, S Chaillou, S Ferrario-Méry, C Meyer, F Daniel-Vedele, J Exp Bot., 65 (2014) 789-798 63.Giti Verma, Sujata Mishra, Neelam Sangwan, Samir Sharma, 2015, Reactive oxygen species mediate axis-cotyledon signaling to induce reserve mobilization during germination and seedling establishment in Vigna radiata, Journal of Plant Physiology, Volume 184, 79-88 64 Šerá B, Gajdová I, Serý M, P Spatenka, 2013, New Physicochemical Treatment Method of Poppy Seeds for Agriculture and Food Industries Plasma Sci Technol 15:935-938 65.Jiafeng J, Xin H, Ling L, Jiangang L, 2014, Effect of Cold Plasma Treatment on Seed Germination and Growth of Wheat Plasma Sci Technol 16:54-58 66 Sera B ,2010, Influence of Plasma Treatment on Wheat and Oat Germination and Early Growth IEEE Trans Plasma Sci 30:2963-2968 67 Misra NN, Patil S, Moiseev T, Bourke P, Mosnier J P, Keener KM ,2014, In- package atmospheric pressure cold plasma treatment of strawberries J Food Eng 125:131-138 68 Henselová M, Slováková L, Martinka M, Zahoranová A , 2012, Growth, anatomy and enzyme activity changes in maize roots induced by treatment of seeds with low-temperature plasma Biologia 67:490-497 69 Zhenguo Ma, Frédéric Marsolais, Natalia V Bykova, Abir U Igamberdiev, 2016, Nitric Oxide and Reactive Oxygen Species Mediate Metabolic Changes in Barley Seed Embryo during Germination, Front Plant Sci 70 L Sivachandiran, A Khacef, 2017, Enhanced seed germination and plant growth by atmospheric pressure cold air plasma: combined effect of seed and water treatment, The Royal Society of Chemistry’s Journals, pp 1822-1832 71 S Padureanu, V Stoleru, A Patras, R Burlica, D Dirlau, D Astanei, O Beniuga, 2018, Effect of Non-Thermal Activated Water on Lactuca Sativa L Germination Dynamic, 10th International Conference and Exposition on Electrical and Power Engineering (EPE2018) n vă ạc th sỹ nh Si c họ 55 ận Lu 72 Salek A S., Mutasim B., Shaf M., Masum M., Forhad H., Farjana B O., Nepal C R., Kazi M F H., Mamunur R T., Ahmad H., Md Abu R., 2019, Plasma activated water: the next generation eco friendly stimulant for enhancing plant seed germination, vigor and increased enzyme activity, a study on black gram (Vigna mungo L.), Plasma Chemistry and Plasma Processing 73 Trịnh Khánh Sơn, Nguyễn Thị Thu Thảo, 2014, Ứng dụng công nghệ plasma chế biến bảo quản thực phẩm, Báo cáo phân tích xu hướng Cơng nghệ 74 Brijesh Tiwarie, Paula Bourkeb, Patrick J Cullenb, 2018, Plasma activated water and airborne ultrasound treatments for enhanced germination and growth of soybean, Innovative Food Science and Emerging Technologies, No 49, 13-19 75 Dongjie Chen1, Paul Chen, Yanling Cheng, Peng Peng, Juer Liu, Yiwei Ma, Yuhuan Liu, Roger Ruan, 2018, Deoxynivalenol Decontamination in Raw and Germinating Barley Treated by Plasma-Activated Water and Intense Pulsed Light, Food and Bioprocess Technology 76.Rohit Thirumdasa, Anjinelyulu Kothakotab, Uday Annapurec, Kaliramesh Siliverud, Renald Blundelle, Ruben Gattf, Vasilis P Valdramidis, 2018, Plasma activated water (PAW): Chemistry, physico-chemical properties, Applications in food and agriculture, Trends in Food Science & Technology, 77, 21-31 77 Patricia Lariguet, Philippe Ranocha, Mireille De Meyer, Odile Barbier, Claude Penel & Christophe Dunand, 2013, Identification of a hydrogen peroxide signalling pathway in the control of light-dependent germination in Arabidopsis, Planta volume 238, pages 381–395 78.Karin Weitbrecht, Kerstin Müller, Gerhard Leubner-Metzger, 2011, First off the mark: early seed germination, Journal of Experimental Botany, Volume 62, Issue 10, Pages 3289–3309 79 Ken’ichi Ogawa, Masaki Iwabuchi, 2001, A Mechanism for Promoting the Germination of Zinnia elegans Seeds by Hydrogen Peroxide, Plant and Cell Physiology, Volume 42, Issue 3, Pages 286–291 n vă ạc th sỹ nh Si c họ 56 ận Lu 80 M Andrews J.A Raven P.J Lea, 2013, Do plants need nitrate? The mechanisms by which nitrogen form affects plants, Annals of Applied Biology 81 Hoàng Minh Tấn, Nguyễn Quang Thạch, Vũ Quang Sáng, 2006, Giáo trình Sinh lý thực vật, NXB trường Đại học Nông nghiệp I Hà Nội 82 Xiaoting Gao, Ai Zhang, Paul Heroux, Wolfgang Sand, Zhuyu Sun, Jiaxun Zhan, Cihao Wang, Siyu Hao, Zhenyu Li, Zhenying Li, Ying Guo, and Yanan Liu; 2019, Effect of Dielectric Barrier Discharge Cold Plasma on Pea Seed Growth, J Agric Food Chem, 67, 10813−10822 83.Bhawana Adhikari, Manish Adhikari, Bhagirath Ghimire, Gyungsoon park & Ha choi, 2019, Cold Atmospheric plasmaActivated Water irrigation induces Defense Hormone and Gene expression in tomato seedlings, Scientific report 84 Leslie S Katzman, Alan G Taylor, Robert W Langhans, 2001, Seed Enhancements to Improve Spinach Germination, Hortscience, 36, 979-981 85 Myoung Sook Kim, Mellissa Blake, Jin Hyen Baek, Glenda Kohlhagen, Yves Pommier and France Carrier, 2003, I nhibition of Histone Deacetylase Increases Cytotoxicity to Anticancer Drugs Targeting DNA, Cancer Research, Volume 63, Issue 21 n vă ạc th sỹ nh Si c họ