Chương IV Kỹ thuật sản xuất giống tôm biển nâng cao (Advanced technologies for shrimp larviculture) Cắt cuống mắt để kích thích tôm đẻ Eyestalk ablation for inducing spawning Truy cập 10-03-05 An Giang online theo Nông Thôn Ngày Nay Trong tự nhiên, tôm cái trưởng thành giao vĩ ngay sau khi lột xác. Chúng chứa tinh của tôm đực trong nang lưu tinh cho đến khi đẻ trứng. Sau đó, buồng trứng mới phát triển và tôm đẻ. Vì sao phải cắt cuống mắt thì tôm mới đẻ Khi tôm chuyển từ tình trạng bình thường sang tình trạng sinh sản thì có sự thay đổi cơ bản về tương quan giữa hormon kích thích sinh sản và hormon ức chế các quá trình này. Trong đó hormon ức chế sự sinh sản được sản xuất, tích tụ và phóng thích từ cuống mắt của tôm. Như vậy cuống mắt tôm giống như một cái máy phát ra tín hiệu hoá học ngăn cản sự sinh sản. Vì vậy, cắt cuống mắt tôm cũng giống như tháo gỡ cái máy phát ra tín hiệu này. Nhờ thế mà sự phát triển của buồng trứng và đẻ trứng được giải tỏa. Buồng trứng phát triển liên tục và tôm đẻ. Nghĩa là sau khi cắt cuống mắt, tôm đẻ cấp tập vài lần (có khi tới 5 lần). Tuy nhiên chất lượng mỗi lần sinh sản sau cũng giảm so với lần trước đó. Cho đến khi trên thực tế sự sinh sản của tôm không mang lại hiệu quả sinh học và hiệu quả kinh tế thì phải loại bỏ chúng. Đến nay có khoảng 20 loài tôm khác nhau được áp dụng thủ thuật cắt cuống mắt để kích thích sinh sản. Phương pháp cắt cuống mắt Để cắt cuống mắt cho tôm, người ta thường đốt, kẹp hoặc thắt cuống mắt của tôm mà không cắt rời ngay để tránh sự chảy máu (dịch cơ thể). Ở Việt Nam, các nhà sản xuất tôm giống dùng dây cao su nhỏ (dây thun) thắt cuống mắt. Mắt bị thắt cuống có thể rụng sau đó nhưng dịch cơ thể không bị thất thoát. Ngay sau khi cắt cuống mắt, cần theo dõi chặt chẽ sự phát triển của buồng trứng. Khi thấy buồng trứng đang ở giai đoạn IV thành thục, lập tức tôm được tách riêng vào bể đẻ. Hạn chế Tôm bị cắt cuống mắt chỉ đẻ 3-5 lần và đời sống sinh sản cũng chấm dứt. Trong khi tôm ở ngoài tự nhiên không bị cắt cuống mắt và có thể đẻ nhiều lần hơn trong một khoảng thời gian dài, cho ra nhiều tôm con hơn. Vì vậy người ta đã nghiên cứu làm sao để có thể kích thích tôm đẻ mà không cần cắt cuống mắt. Việc ứng dụng tiêm serotonin cho tôm cái đã được thực hiện và tỉ lệ tôm đẻ lần đầu là 35,4%, gấp 6 lần đối chứng. Tỉ lệ tôm đẻ tiếp trong lần hai là 6,7%. Tính chung số tôm đẻ do được kích thích bằng serotonin gấp 7 lần so với đối chứng. Tỉ lệ tôm đẻ nhờ tiêm serotonin thấp hơn tôm được cắt cuống mắt. Nhưng sau những lần đẻ dồn dập số tôm cắt cuống mắt không thể tiếp tục được dùng để sản xuất tôm giống. Trong khi những chú tôm đã đẻ nhờ serotonin vẫn tiếp tục sinh sản vì không bị tổn thương, nhờ thế mà người ta có thể kéo dài được tuổi thọ sinh sản của tôm. Kích thích tôm đẻ không cần cắt cuống mắt Inducing shrimp spawning without eyestalk ablation Nông Nghiệp Việt Nam 3/2/2004 Viet Linh Một cách hình tượng, có thể coi cuống mắt của tôm cùng với một vài cấu trúc nội tiết khác như một hệ thống điều tiết nước chảy từ một hồ chứa. Việc cắt cuống mắt tương tự như phá đập để lấy nước. Lúc đầu thì nước chảy ồ ạt nhưng mức nước ở hồ sụt nhanh và mất khả năng điều tiết. Tôm cái bị cắt cuống mắt chỉ đẻ 3 -5 lần và đời sống sinh sản của nó chấm dứt ở đó. Tôm cái trong tự nhiên hẳn là không bị cắt cuống mắt và có thể đẻ nhiều lần hơn trong một khoảng thời gian dài, cho ra nhiều tôm con hơn. Một thí nghiệm gần đây trên loài tôm he chân trắng, là loài đến nay vẫn được cắt cuống mắt để kích thích sinh sản cho thấy, có thể kích thích đẻ mà không cần cắt cuống mắt. Người ta tiêm Serotonin cho tôm cái và tỷ lệ tôm đẻ lần đầu là 35,4%, gấp 6 lần đối chứng. Tỷ lệ tôm đẻ tiếp trong lần hai là 6,7. Tính chung số tôm đẻ do được kích thích bằng serotonin gấp 7 lần so với đối chứng. Tất nhiên là tỷ lệ tôm đẻ nhờ tiêm serotonin là thấp hơn tỷ lệ tôm đẻ do được cắt cuống mắt. Nhưng sau những lần đẻ dồn dập do được cắt cuống mắt thì những tôm như thế không thể tiếp tục được dùng để SX giống nữa. Trong khi ấy, chắc chắn những tôm đã đẻ nhờ serotonin vẫn có thể tiếp tục sinh sản vì không bị những tổn thương bất khả hồi. Kết quả nghiên cứu này rất khích lệ vì nhờ thế người ta có thể kéo dài được tuổi thọ sinh sản của tôm một cách đáng kể. Phương pháp cấy tinh nhân tạo tôm sú Techniques of artificial fertilization for shrimp Sau khi tôm cái lột xác, tiên hành cấy tinh tốt nhất từ 12 đến 24 giờ sau. Bắt tôm mẹ lên khỏi mặt nước, dùng que bông gòn se vào thelycum để hai mép thelycum hở ra, sau đó đưa tinh trùng vào. After the female molting 12-24 hours, move the newly-molted female out of water, use a stick with cotton-covered tip to slightly insert into its thelycum in order to open this organ, and then put the sperm inside the opened thelycum. Có hai cách lấy tinh trùng từ tôm đực: There are two techniques for collecting sperms: (1) Dùng tay nặn lấy tinh trùng, sau đó tôm đực được nuôi vỗ lại, tinh trùng sẽ phục hồi sau 7 đến 10 ngày. Tuy nhiên tinh trùng được lấy ra theo phương pháp nầy đễ bị nhão dẫn đến khó khăn trong quá trình cấy. Press manually to get sperms, then the male is reared for repeat maturation, its sperm sac will be full again after 7-10 days. However, with this technique, the sperms are frequently scattered resulting in difficult to inoculation. (2) Giết tôm đực để lấy tinh trùng. Theo phương pháp nầy tinh trùng không bị nhão. Kill the male to obtain sperms. With this technique, the sperm density is remained dense. Khi ôm cái lột xác mà chưa tìm được tôm đực, tinh trùng vẫn có thể cấy được sau 2-3 ngày. Trong trường hợp nầy, hạn chế bắt tôm mẹ ra khỏi nước. Vì nếu tôm mẹ bị đem ra khỏi nước thường xuyên thì thelycum sẽ bị cứng lại nhanh chóng, quá trình thụ tinh nhân tạo sẽ trở nên khó khăn. When the female molting but the male is not available, sperms are still can be inoculated after 2-3 days. In this case, it is limited to move the newly-molted female out of water because its thelycum will be harden more rapidly resulting in difficult for artificial fertilization Mô tả ngắn về hệ thống tuần hoàn áp dụng trong các trại sản xuất tôm giống gần Cần Thơ (Đồng bằng sông Cửu Long) (đang in) Brief description of the recirculation system used in backyard shrimp hatcheries near Can Tho (Mekong delta, Vietnam) (in press) These hatchery systems were set up by Thach Thanh and Truong Trong Nghia based on technology developed at the College of Aquaculture & Fisheries of the Can Tho University and the Artemia Reference Center of the Ghent University (inspired from the ARC rotifer recirculation systems - see Suantika et al., 2001 and 2002) These hatchery systems were set up by Thach Thanh and Truong Trong Nghia based on technology developed at the College of Aquaculture & Fisheries of the Can Tho University and the Artemia Reference Center of the Ghent University (inspired from the ARC rotifer recirculation systems - see Suantika et al., 2001 and 2002) Seawater is made up of 120 g/l brine diluted with freshwater to 30 g/l; treatment of seawater in 20 m3 concrete tanks with hypochlorite, neutralisation with thiosulphate, 48 hrs for aeration, after sedimentation for 24 hrs water is pumped via a protein skimmer operated with ozone (small airbubble diffuser) to fill up culture tank with 2 m3 (half volume); 24 hrs rest with aeration before stocking with nauplii · 1 unit consists of 4 tanks of 4 m3 each; each tank is connected with the central filter system via a protein skimmer operated with ozone · The filter system consists of 1 concrete tank subdivided in 3 compartments; water flows into the 1 st compartment in a submerged bin filled with activated carbon (neutralization of ozone – alternative for 2 nd protein skimmer with air); the 1 st , 2 nd and the 3 rd compartments are filled with sand, coral, respectively gravel and several air-water lifts operate these 3 compartments as submerged trickling filters; water flows from one compartment to the other via bottom overflows; one 500 l plastic bin is mounted above the central reservoir and acts as a dry trickling filter (filled with gravel substrate); the total volume of the filter system is 4 m3; for start up procedure of the biofilter see further Cho ăn Feeding · Initially, per culture tank 400 nauplii per liter are stocked in 2 m3 seawater (half tank volume) to which Chaetoceros culture is added (up to 50,000 cells per ml) · Chaetoceros is added 3 times per day and concentrations are gradually increased (115,000 in Z2, 200,000 in Z3); 1g/m3 of a probiont mixture is added at the start and once every 2 days during the batch culture period only; composition of the probiont mixture: Streptococcus faecium, Bacillus subtilis, B. licheniformis, baker’s yeast, aspergillus, amylase, protease and lipase (BZT Aquaculture USA) · At the time of molting from Z to M the compound feeds Frippak and Lansy are added at a rate of 3 feedings of 1-4 g/m3 per day according to stage and survival. To M stage, water in the rearing tank has been filled to full tank volume (4 m3). · From M2 onwards umbrella Artemia is fed, from PL1 to PL5 Artemia nauplii and from PL5 to PL12 enriched Artemia (DHA Selco, 12hrs enrichment starting with instar II Artemia); consumption of 3 kg Artemia cysts per million PL12 produced · Water volume reaches 4 m3 by the time larvae reach PL stage (8 days from start of batch culture) at which moment the tank is connect to the recirculation system (via circular filter tube that retains the Artemia nauplii within the culture tank); recirculation starts at 300 % per day and eventually is increased up to 400 % per day (when nitrite and ammonium test kit results reveals a decrease in water quality in the culture tank) · Survival at harvest of PL12 averages 30 % (50% of batches obtain 60% survival) · From PL10 water salinity is gradually lowered over the following 2 days to reach 10 g/l in the culture tank at the harvest of PL12 · 50% of the water from the culture tank is re-used to make up new seawater by disinfection (see above) (50% of rearing water is drained first to make up space of freshwater supplementation) · complete disinfection of all tanks as well as the biofilter with hypochlorite upon starting a new batch. · start new culture in batch: as above). During batch culture period the biofilter is being activated (see next item) · 2 weeks start up period for the biofilter: 30 ppt disinfected/ozone-treated seawater + NMX inoculum (for the 1 st set up of the biofilter, for consecutive runs substrate from other operational biofilter systems is used as inoculum) + NH4Cl (as substrate for the bacteria); every other day extra addition of NH4Cl; from day 7 check of ammonium level – if undetectable NH4Cl dose is doubled; 3 days later check of ammonium and nitrite level (normally 0.01 and 0.02 mg/l, respectively) and new addition of NH4Cl; 24hrs later ammonium level should be zero and the culture tanks can be connected to the biofilter = start of recirculation system · Private hatchery of Thach Thanh operates 4 independent recirculation units, each one producing 1 million PL12 per cycle (25 days total culture period); 6 cycles completed in the period Dec 03 – May 04 = 15 million PLs produced; staff of 2 persons for the hatchery and one person operates the maturation unit (wild spawners, cost early June 300 US $ per animal; 2 spawns only as nauplius quality is lower from 3 rd spawn onwards); PL12 are sold at 3.3 US $ per 1000 (versus 2 US $ per thousand in open-system hatcheries) as farmers prefer the quality of the postlarvae produced in a recirculation system · 1500 open-system hatcheries in the whole Mekong delta, of which 170 and 30 recirculation units (in the Mekong delta and Can Tho area, respectively – expertise provided by the Can Tho University) · Farmers accept double price (60 VND/PL12) for PL produced by recirculation system (They call Can Tho University PL) as compared to PL from batch system sourced form the batch system. · High price for Can Tho is due to: (i) best PL quality (score > 80 by Watchana Sunthorn stress test metrhod); (ii) more successful to harvest (70-80% successful harvest compared to 30-40% from batch system PL); (iii) high survival at harvest (80% copared to 30-40% with PL from batch system); and less risk of WSSV infection during growout period (in many cases, only ponds stocked with CTU PL survive in a heavy WSSV epidemic areas) Your browser does not support inline frames or is currently configured not to display inline frames. [xem VIDE0 PL15] References SUANTIKA, G.; DHERT, P.; NURHUDAH, M.; SORGELOOS, P. - 2000 High-density production of the rotifer Brachionus plicatilis in a recirculation system: consideration of water quality, zootechnical and nutritional aspects. Aquacultural Engineering 21: 201-214 SUANTIKA, G.; DHERT, P.; ROMBAUT, G.; VANDENBERGHE, J.; DE WOLF, T.; SORGELOOS, P 2001 The use of ozone in a high density recirculation system for rotifers. Aquaculture, 201: 35-49. Chương II Dinh dưỡng tôm biển trong sản xuất giống (Shrimp nutrition in larviculture) [Bài học 1] [Bài học 2] [Bài học 3] Bài học 1 Các chất dinh dưỡng thiết yếu: Các chất béo Tài liệu tham khảo: Tacon, A.G.J., 1987. Essential nutrients - Lipids. In: The nutrition and feeding of farmed fish and shrimp - A training manual - 1. The essential nutrients. FAO, Brasil. 27, 28, 29, 30, 31, 32, 33 3. Các chất dinh dưỡng thiết yếu - Chất béo [21] Chất béo là nhóm ngoại sinh của các chất tìm thấy trong mô thực vật và động vật, mà các chất nầy có tính chất tương đối không tan trong nước, và tan trong các dung môi hữu cơ, như là ether, chloroform và benzen . 3.1. Chất béo (Lipids) 3.1.1. Phân loại Các chất béo có thể được chia thành 2 nhóm cơ bản tùy thuộc vào sự hiện diện hoặc không có alcohol glycerol (xem sơ đồ). 3.1.2. Chức năng tổng quát Các chất béo là các nguồn quan trọng của năng lượng biến dưỡng (ATP). Thực vậy, các chất béo thì giàu năng lượng nhất trong tất cả các loại chất dinh dưỡng: Giá trị năng lượng thô của chất báo, đạm và carbonhydrrat lần lượt là 9,5; 5,6 và 4,1 kcal g -1 . Theo khía cạnh nầy, các chất béo dinh dưỡng có thể được dùng để tiết kiệm đạm có giá trị hơn cho sinh trưởng. Đặc biệt, các acid béo tự do dẫn xuất từ các triglyceride (các loại mỡ và dầu) là nguồn nhiên liệu hiếu khí cho biến dưỡng năng lượng của mô cá. Các chất béo là các thành phần thiết yếu của tất cả màng và màng phụ tế bào (các loại chất béo có liên quan bao gồm acid béo không no mức độ cao chứa các phosphorlipid và các sterol esther). Các chất béo đóng vai trò như là vật chuyên chở sinh học cho sự hòa tan các sinh tố tan trong chất béo như là A, D, E và K. Các chất béo là nguồn của các acid béo thiết yếu, mà đến lượt nó thì cần thiết cho sự duy trì tính nguyên vẹn của màng tế bào để bảo đảm cho sự vận chuyển chất béo tối ưu (bám vào các phospholipid như là các tác nhân nhũ tương hóa), và là các tiền chất của các nội tiết tố prostaglandin. [22] Các chất béo được tin là có một vai trò như là nâng đỡ / đệm cho các cơ quan quan trọng của cơ thể, và giúp duy trì sự nổi độc lập. Các chất béo là nguồn của các steroid thiết yếu, mà đến lượt chúng lại cho thấy một phạm vi rộng các chức năng sinh học quan trọng (có nghĩa là, sterol cholesterol có liên quan trong sự duy trì các hệ thống màng, cho vận chuyển các chất béo, và như là một tiền chất của sinh tố D3, các acid mật, và các nội tiết tố steroid - các androgen, các estrogens, các nội tiết tố tuyến thượng thận, và các corticosteroid). Theo quan điểm kỹ thuật về dinh dưỡng, các chất béo tác động như là chất bôi trơn cho đường đi của thức ăn qua khẩu phần thức ăn viên, như là các chất làm giảm độ bụi bặm của thức ăn, và đóng vai trò trong vị ngon của thức ăn. 3.2. Mỡ và dầu (Fats and oils) Nhiên liệu hoặc năng lượng có thể được chứa trong thực vật như là tinh bột, và trong động vật như là glycogen, nhưng nó cũng có thể được chứa trong cả thực và động vật ở một dạng cô đặc hơn như là mỡ và dầu. Ở thực vật, mỡ và dầu được tạo thành từ carbonhydrate (như là ở thực vật, khi hạt giống chín muồi, lượng tinh bột của chúng giảm xuống trong khi hàm lượng mỡ tăng lên). Ở động vật, mỡ cũng cũng có thể được tạo thành từ carbonhydrate (nghĩa là khi vỗ béo một con heo với thức ăn chứa phần lớn carbonhydrate). Tuy nhiên, không giống như thực vật, động vật cũng có thể tích lũy mỡ trong cơ thể từ mỡ ăn vào. Sự khác nhau duy nhất giữa mữ và dầu là chất sau ở thể lỏng dưới nhiệt độ trong phòng, trong khi mỡ thì ở dạng sệt. 3.2.1. Thành phần Mỡ và dầu thường hiện diện trong thức ăn và trong mỡ tích lũy ở hầu hết động vật dưới dạng các triglyceride, là các ester của các acid béo và glycerol. Mỡ và dầu tự nhiên được cấu tạo do các triglyceride hỗn hợp, trong đó glycerol được ester hóa với các loại acid béo khác nhau, nghĩa là các acid béo R 1 , R 2 và R 3 , do đó: Không có mỡ hoặc dầu tự nhiên tìm thấy trong thiên nhiên gồm có các triglyceride giống nhau. Có thể thấy rằng đơn vị cơ bản và biến đổi của các triglyceride, là thành phần acid béo, đến lượt nó sẽ ảnh hưởng đến tính chất vật lý và hóa học của mỡ và dầu. 3.2.2. Cấu trúc và phân loại acid béo Hơn 40 acid béo khác nhau được biết có trong tự nhiên. Tất cả chúng đều có thể đựợc thể hiện bằng công thức tổng quát: CH 3 (CH 3 ) n COOH trong đó: n= 0 ở acid Acetic; n=1 ở acid Propionic; n= 2 ở Butyric acid đến n= 24 (trong đó n thường là số chẵn). [23] Hầu hết các acid béo có trong tự nhiên chứa một nhóm COOH và một chuỗi carbon (C) thẳng không phân nhánh, mà chuỗi nầy có thể không chứa nối đôi (acid béo bão hòa = saturated fatty acid), chứa 1 nối đôi (acid béo không no 1 nối đôi = mono-unsaturated fatty acid), hoặc chứa hơn 1 nối đôi (acid béo không no nhiều nối đôi = polyunsaturated fatty acid = PUFA). Hệ quả là mức độ không bão hòa sẽ ảnh hưởng rất lớn đến các tính chất vật lý của các mỡ được tạo thành, như là một cách tổng quát các acid béo không no thì phản ứng hóa học nhanh hơn và có điểm nóng chảy thấp hơn các acid béo bão hòa tương ứng. Thí dụ về các acid béo bão hòa và không no được liệt kê dưới đây: Acid béo Cấu trúc Viết tắt* Bão hòa Acid Butyric CH 3 (CH 2 ) 2 COOH 4:0 Acid Caproic CH 3 (CH 2 ) 4 COOH 6:0 Acid Capric CH 3 (CH 2 ) 8 COOH 10:0 Acid Lauric CH 3 (CH 2 ) 10 COOH 12:0 Acid Myristic CH 3 (CH 2 ) 12 COOH 14:0 Acid Palmitic CH 3 (CH 2 ) 14 COOH 16:0 Acid Stearic CH 3 (CH 2 ) 16 COOH 18:0 Không no** Acid Palmitoleic CH 3 (CH 2 ) 5 CH=CH(CH 2 ) 7 COOH 16:1n-7 Acid Oleic CH 3 (CH 2 ) 7 CH=CH(CH 2 ) 7 COOH 18:1n-9 Acid Linoleic CH 3 (CH 2 ) 4 CH=CHCH 2 CH=CH(CH 2 ) 7 COOH 18:2n-6 Acid Linolenic CH 3 (CH 2 )CH=CHCH 2 CH=CHCH 2 CH=CH(CH 2 ) 7 COOH 18:3n-3 Acid Arachidonic CH 3 (CH 2 ) 4 CH=CHCH 2 CH=CHCH 2 CH=CHCH 2 CH=CH(CH 2 ) 7 COOH 20:4n-6 Acid Eicosapentaenoic CH 3 CH 2 CH=CHCH 2 CH=CHCH 2 CH=CHCH 2 CH=CHCH 2 CH=CH(CH 2 ) 3 COOH 20:5n-3 Acid Docosahexaenoic CH 3 CH 2 CH=CHCH 2 CH=CHCH 2 CH=CHCH 2 CH=CHCH 2 CH=CHCH 2 CH=CH(CH 2 ) 2 COOH 22:6n-3 * Số lượng carbon (C) : số lượng nối đôi n - vị trí của nối đôi thứ nhất đếm từ nhóm methyl (CH3) ở đầu của acid béo * Ở thể lỏng dươid nhiệt độ trong phòng Dựa vào cơ sở phân loại trên, các PUFA có thể được chia thành 3 họ chính: họ (n-9) oleic, họ (n-6) linoleic và họ (n-3) linolenic, các tên của họ tượng trưng cho thành viên chuỗi ngắn nhất trong nhóm, với các thành viên trong họ khác được dẫn xuất từ 3 nhóm cơ bản nầy. 3.2.3. Sinh tổng hợp acid béo Ngoại trừ loài ốc trên cạn (Cepaea nemoralis), các động vật không có khả năng tổng hợp trong cơ thể sống các acid béo có nối đôi ở vị trí n-6 (họ linoleic) và họ n-3 (họ linolenic); chỉ có thực vật là có khả năng nầy. Tuy nhiên, đa số động vật đều có khả năng tổng hợp các acid béo bão hòa có chuỗi chẵn trong cơ thể sống từ acetate, hoặc thêm hai đơn vị carbon vào đầu carboxyl của acid béo và thêm hai nối đôi nữa vào phía carboxyl của các nối đôi hiện có, nhưng không thêm vào phía đầu methyl (Castell et al., 1986). [24] Các con đường sinh tổng hợp PUFA ở cá và tôm có thể được tóm tắt như sau: Chú thích: Mũi tên dọc chỉ phản ứng kéo dài chuỗi. Mũi tên ngang chỉ phản ứng khử bão hòa (= làm tăng nối đôi) 3.2.4. Nhu cầu về acid béo thiết yếu (= essential fatty acid = EFA) Bởi vì sự bất lực của động vật để tổng hợp trong cơ thể sống các acid béo của họ n-6 và n-3, những acid béo nầy phải được cung cấp dưới dạng sẵn có trong thức ăn. Đối với động vật trên cạn. Họ linoleic (n-6) được tìm thấy có các hoạt động mạnh nhất về acid béo thiết yếu, trong khi đối với họ linolenic (n-3) chỉ có một phần hoạt động nầy. Do đó kết quả là các acid béo ưu thế (PUFA) trong mô của động vật trên cạn là thuộc họ linoleic, gọi là 18:2n-6 (acid Linoleic) và 20:4n-6 (acid Arachidonic). Ngược lại, PUFA ưu thế trong mô của cá và tôm thuộc họ linolenic (n-3), điều nầy áp dụng tương tự cho cá nước ngọt và cá biển. Nồng độ PUFA n-6 trong mô của cá thì thường thấp, mặc dù các mức độ cao hơn đã được báo cáo trong các loài cá nước ngọt. Có lẽ không ngạc nhiên nếu nhận xét là khẩu phần cho cá nước ngọt chứa các thành phần lấy từ các nguồn trên cạn, và đương nhiên là giàu các acid béo họ n-6. Nói chung người ta tin rằng các acid béo họ n-3 cho phép một mức độ cao hơn của sự không bão hòa, một nhu cầu cho sự trơn nhớt của màng tế bào, sự uyển chuyển và sự thẩm thấu cao hơn ở nhiệt độ thấp. Thực vậy, nói chung người ta tin rằng nhu cầu dinh dưỡng (ưu đãi) của cá các acid béo thiết yếu họ n-3 so với họ n-6 thì cơ bản là do nhiệt độ thấp trong môi trường nước của chúng (khi so sánh với động vật hữu nhũ). Thực vậy, nhiệt độ nước càng thấp, thì mức độ kết hợp của PUFA họ n-3 với mô càng cao. Ngoài sự khác nhau về hàm lượng PUFA họ n-6 trong mô của các loài cá nước ngọt và cá biển, cá nước ngọt nói chung cũng có nồng độ PUFA n-3 chuỗi ngắn hơn trong mô. Với sự ngoại lệ của các loài cá ăn mồi nghiêm ngặt, cá có thể kéo dài chuỗi và sau đó khử sự bão hòa 18:2n-6 (acid Linoleic) hoặc 18:3n-3 (acid Linolenic) (tùy theo loài cá) thành các acid béo không no mức độ cao (highly únatủated fatty acid = HUFA) tương ứng: 20:4n-6 (acid Arachidonic) trong trường hợp họ n-6, và 20:5n-3 (acid Eicosapentaenoic = EPA) hoặc 22:6n-3 (acid Docosahexaenoic = DHA) trong trường hợp họ n-3. Nói chung người ta tin rằng các HUFA nầy chịu trách nhiệm cho các chức năng biến dưỡng then chốt, được gọi là các acid béo thiết yếu (= EFA). Thực vậy, đối với hầu hết các loài cá, HUFA có hoạt động EFA mạnh hơn so với đơn vị cơ bản tương ứng (18:2n-6 và 18-3n-3). Nói chung, cá nước ngọt xứ lạnh có nhu cầu duy nhất về PUFA n-3 (18:3n-3, 20:5n-3 và 22:6n-3) trong khẩu phần ăn của chúng (như là bọn cá hồi, cá Ayu), trong khi cá nước ngọt xứ ấm có nhu cầu về cả hai PUFA họ n-3 và n-6 (như cá chép, lươn và có thể là cá trơn channel), hoặc chỉ cần PUFA n- 6 (như là bọn Rô phi, và có thể là cá lóc (Channa micopeltes) (xem tổng quan của Kanazawa, 1985). Trong trường hợp các loài cá dữ ở biển (như là [25] red seabream, black seabream Mylio macrocephalus, opaleye Girella nogricans, puffer fish Fogu rubripens, yellow tail Seriola quinqueradiata, plaice Pleuronectes platessa, gilthead bream Sparus auratus, turbot Scophthalmus maximus), do các sinh vật bị chúng tiêu thụ (dùng làm thức ăn) giàu DHA và EPA, nên chúng đã tiêu biến khả năng kéo dài chuỗi và sau đó khử bão hòa 18:3n-3 thành HUFA tương ứng. Do đó, cá dữ ở biển phải được cung cấp DHA và EPA dạng có sẵn (Kanazawa, 1985). Nhu cầu dinh dưỡng về EFA của cá đựoc tóm tắt trong bảng dưới: Bảng. Nhu cầu acid béo thiết yếu cho dinh dưỡng của cá (% của khẩu phần khô) Cá Nhu cầu Tài liệu tham khảo Cá nước ngọt xứ lạnh Raibow trout 1%18:3n-3 hoặc 1%HUFAn-3 Castell et al., 1972; Watanabe et al., 1974; Yu & Sinnhuber, 1972; Takeuchi & Watanabe, 1977 Coho salmon 1%18:3n-3 Yu & Sinnhuber, 1979 Chum salmon 1%18:3n-3 + 1%18:2n-6 hoặc 1%HUFAn-3 Takeuchi, Watanabe & Nose, 1979 Ayu 1%18:3n-3 hoặc 1%20:5n-3 Takeuchi & Watanabe, 1982 Cá nước ngọt xứ ấm Common carp 1%18:3n-3 + 1%18:2n-6 hoặc 0.5-1%HUFAn-3 Takeuchi & Watanabe, 1977a Channel catfish <1%18:3n-3 Robinson & Lovell, 1984 Tilapia zilli 1%18:2n-6 hoặc 1%20:4n-6 Kanazawa et al., 1980a Tilapia nilotica hoặc 1%20:4n-6 Teshima, Kanazawa & Sakamoto, 1982; Takeushi, Satoh & Watanabe, 1983 Eel 0.5%18:2n-6 + 0.5%18:3n-3 Takeushi et al., 1980 Cá biển Turbot 0.6-1%HUFAn-3 Gatéoup et al., 1977, 1977a Red seabream 0.6-2%HUFAn-3 Yone et al., 1978 Hiện nay, không có thông tin định lượng chắc chắn về nhu cầu EFA dinh dưỡng của tôm biển hoặc tôm nước ngọt, thông tin có hiện nay mang tính đề nghị hơn là khẳng định. Tuy nhiên cũng như cá, người ta tin rằng acid béo họ n-3 có hoạt động EFA cao hơn họ n-6 ở tôm biển và tôm nước ngọt (Castell et al., 1986; NRC, 1983; Sandifer & Joseph, 1976). Tổng quát, dầu cá biển, tôm và nhuyễn thể thì giàu nguồn EFA họ n-3 dinh dưỡng. Các loại dầu mà thành phần EPA và DHA chiếm hơn 20% tổng acid béo hiện diện trong dầu gan cá tuyết (cod, Gadus morhua), dầu gan mực nang (cuttle fish, Ommastrephes sloani), dầu của short-necked clam, dầu cá sardine (Sardinops), dầu skipjack (cá ngừ vằn, Katsuwonus pelamis; cá ngừ Phương Đông, Sarda orientalis), dầu đầu tôm và dầu gan mực ống (squid, Ommastrephes). [26] Ngược lại, dầu thực vật thì giàu nguồn dinh dưỡng 18:2n-6, và chứa ít hoặc không có EFA họ n-3 (với ngoại lệ dầu đậu nành (soybean), dầu cải dầu (rapeseed) và đặc biệt dầu hạt lanh (linseed) có hàm lượng 18:3n-3 có thể vượt đến 8, 7 và 56% tương ứng trong tổng các acid béo hiện diện. Dầu thực vật mà hàm lượng 18:2n-6 của nó tạo thành 50% hoặc hơn trong tổng các acid béo hiện diện bao gồm dầu hạt bông vải, dầu bắp, dầu hạt hướng dương và dầu đậu nành. Cuối cùng, các số lượng mức độ vết (trace quatities) của 20:4n-6 (0.5-1.5%) được tìm thấy trong dầu động vật trên cạn (heo, cừu), bột gan, dầu cá hồi (salmon), dầu gan cá pollack (cá minh thái = cá mintai = Theragra chalcoggramma; cá tuyết lục, Pollachius viens), dầu gan mực nang (cuttle fish), short- necked clam, dầu cá skipjack, dầu gan mực ống và dầu gan cá trích (herring, Clupea) (xem bảng 4, trang [26]). [Bài học 1] [Bài học 2] [Bài học 3] Bài học 2 Các triacylglycerol và acid béo (fatty acid) Tài liệu tham khảo: D'Abramo, L.R.,1997. Triacylglycerols and fatty acids. In: D'Abramo, L.R., Conklin, D.E. Akiyama, D.M. (Eds.). Crustacean nutrition - Advances in aquaculture, volume 6. World Aquaculture Society, Baton Rouge, LA, USA, pp. 71-80. GIỚI THIỆU [71] Các triacylglycerol (triglyceride) và các thành phần acid béo của chúng là các chất dinh dưỡng quan trọng cho giáp xác. Chương nầy tổng kết các kết quả của các nghiên cứu đã được bố trí để so sánh giá trị dinh dưỡng về số lượng và chất lượng của các triglyceride và acid béo (có giá trị) dinh dưỡng cho giáp xác. Các kết quả nầy sẽ được liên hệ với sự dinh dưỡng acid béo của các loài giáp xác, đặc biệt là khả năng sinh tổng hợp, và các acid béo thiết yếu (esential fatty acid = EFA) và so sánh các vai trò dinh dưỡng của chúng. Hầu hết các nghiên cứu giới hạn trong sự dinh dưỡng của ấu thể nhưng vai trò của các acid béo dinh dưỡng trong các quá trình thành thục và dinh dưỡng ấu trùng càng lúc càng trở nên rõ ràng. CÁC TRIACYLGLYCEROL DINH DƯỠNG Số lượng Các nghiên cứu dinh dưỡng trước đây trên giáp xác cho biết rằng các đáp ứng về tỉ lệ sống và sinh trưởng (tăng trọng) sẽ đạt được khi mức độ dinh dưỡng của một loại dầu hoặc hỗn hợp dầu ở giữa 5 và 8% (Bảng 1). [72] Bảng 1 Tóm tắt các khảo sát đánh giá sự đáp ứng của giáp xác đối với số lượng và chất lượng của triacylglycerol Khảo sát Loài Nguồn chất béo Mức độ chất béo (%) Nguồn protein (%) Quan sát Castell & Covey, 1976 Homarus americanus Dầu gan cá tuyết 1, 5, 10, 15 50% casein Tăng trọng tốt nhất với 5% Davis & Robinson, 1986 Procambarus acutus Dầu cá mòi dầu (menhaden) 0, 3, 6, 9, 12, 15 28,1% casein + 4,5% gelatin Không khác nhau ở mức 0-6%. Giảm tăng trưởng ở mức 9% trở lên Deshimaru et al. (1979) P. japonicus Dầu gan cá pollack (PLO) + Dầu đậu nành (SO) 3, 6, 9, 12 60% casein + lòng trắng trứng Tăng trọng tốt nhất ở 6% PLO : SO (3 : 1 hoặc 1 : 1) Kanazawa et al. (1977a) P. japonicus Dầu đậu nành, pollack dầu phụ phẩm (PRO), short-necked clam oil (SNCO) 8, 12, 16 50% casein Tăng trọng tốt nhất ở 8% SNCO; ngăn cản sinh trưởng ở 16% Sheen và D'Abramo (1991) M. rosenbergii Dầu gan cá tuyết và dầu bắp (2 : 1) 0, 2, 4, 6, 8, 10, 12 Thịt cua tách riêng, 35 hoặc 40% Tăng trọng tốt nhất ở 6% [71] Tuy nhiên trong đa số các nghiên cứu nầy, mức độ được đánh giá là tốt nhất thì cơ bản bị ảnh hưởng bởi nhiều yếu tố: chất lượng và số lượng của đạm dinh dưỡng; chất lượng, số lượng và sự sẵn có của các nguồn năng lượng khác; và nguồn gốc (chất lượng của dầu). Tuy nhiên, mức độ dinh dưỡng cao của dầu thì thường đi kèm với sự giảm có ý nghĩa tốc độ sinh trưởng. Sự gia tăng mức độ dinh dưỡng của dầu thì đi đôi với sự gia tăng mức độ của chất béo trong gan tụy. Sự tích tụ của chất béo có thể là kết quả của sự hạn chế của tốc độ biến dưỡng. Ngoài ra, sự hấp thu thức ăn nói chung được cho là là bị ảnh hưởng bởi hàm lượng năng lượng, và chất béo dinh dưỡng vượt mức có thể làm giảm sự tiêu thụ (Church và Pond, 1982) và cuối cùng dẫn đến sự thiếu dinh dưỡng. Một sự giảm rõ rệt về tốc độ tăng trưởng của Palaemon serratus được quan sát khi mức độ dầu gan cá tuyết và dầu bắp tăng từ 7,5 đến 15% (Foster và Beard, 1973). Deshimaru et al. (1979) cho ấu trùng Penaeus japonicus ăn một khẩu phần chứa hơn hợp 1 : 1 của dầu gan cá pollack và dầu đậu nành ở các mức độ 3, 6, 9 và 12%. [73]Sinh trưởng và hiệu suất thức ăn giảm ở mức độ 9 và 12%. Castell và Covey (1976) đánh giá các mức độ 1, 5, 10 và 15% dầu gan cá tuyết như là nguồn chất béo trong khẩu phần cho tôm hùm Homarus americans. Dựa trên sự đánh giá về tăng trọng trung bình, sự chuyển hóa thức ăn, số lần lột xác, mức độ 5% được tìm ra là có lợi nhất. Không có sự cải tiến rõ rệt trong các biến số đáp ứng (kết quả) xảy ra khi mức độ của dầu dinh dưỡng được tăng lên cả đến 10 hoặc 15%. Kanazawa et al. (1977a) quan sát thấy một sự sụt giảm về phần trăm tăng trọng cơ thể của Penaeus japonicus khi mức độ của bột dầu phụ phẩm pollack được tăng lên từ 12-16%. Davis & Robinson (1986) đã thêm dầu cá mòi dầu như là nguồn chất béo vào khẩu phần để cho ấu thể Procambarus acutus acutus (bây giờ là P. zonangulus). Các mức độ chất béo thay đổi từ 0% đến 15% trong 3% thành phần và sự tăng trưởng giảm được quan sát thấy ở những cá thể được cho ăn khẩu phần chứa 9% chất béo hoặc hơn nữa. Sheen và D'Abramo (1991) đã đánh giá về đáp ứng của tỉ lệ sống và tăng trọng của ấu thể Macrobrachium rosenbergii được cho ăn các khẩu phần chứa một khoảng rộng, 0-12% (2% thành phần), của một hỗn hợp dầu gan cá tuyết và dầu bắp. Các khẩu phần được thiết kế đồng nhất về đạm và giả định là tương tự về calo. Các cá thể được cho ăn khẩu [...]... nước 1 Cắt cuống mắt ở tôm biển: A ? tôm B ? C ? D ? là biện pháp bắt buộc trong sinh sản nhân tạo biển không có tác dụng cho sinh sản kich thích tôm mẹ đẻ trứng nhanh hơn kích thích tôm mẹ tăng trọng 2 Về tình hình sản xuất giống cua biển: A ? Đã được sản xuất giống đại trà như tôm biển B ? Cua mẹ thành thục khó tìm ngoài tự nhiên như tôm biển C ? Chưa đuợc nghiên cứu về sản xuất giống nhân tạo D ? Luân... sinh sản chọn lọc, làm gia tăng mối quan tâm trên thế giới về sự sinh sản trong điều kiện nuôi nhốt tôm biển Kỹ thuật sinh sản nuôi nhốt đã được cung cấp cho vài loài, và các bài tổng kết đã được xuất bản do Primavera (1985), Bray và Lawrence (1992), Ogle (1992) và Browdy (1992, 1998) Sự cung cấp một khẩu phần tối ưu được nhận định là một yếu tố quyết định cho sự thành thục sinh dục và sinh sản ở tôm biển. .. một cách mà chất lượng sinh sản cao, ổn định và kéo dài sẽ được bảo đảm mà không có nhu cầu cắt cuống mắt Thách thức nầy sẽ được thực hiện theo cách không tốn kém và ở mức độ thương mại Chương III Hệ thống sản xuất giống: lọc sinh học tuần hoàn, ozon và probiotics (Larval rearing system: recirculation, ozone and probiotics) Bài học 1 Các hệ thống nuôi thủy sản tuần hoàn Tài liệu tham khảo: [Bìa: 1, 2,... vật biển tươi hoặc đông lạnh tươi được sử dụng để cho kết quả thành thục và sinh sản chấp nhận được Đôi khi những sinh vật biển nầy được nhận thấy cho kết quả tốt nhất khi chúng đang ở giai đoạn sinh sản Mực và hai mảnh vỏ (vẹm = mussel, clam = nghêu, sò = oyster) thường các loại thức ăn chính, được cho ăn với tỉ lệ cao hằng ngày Các giáp xác như tôm, cua, ruốc biển (krill) cũng được cho tôm mẹ sinh sản. .. 3] Bài học 3 Dinh dưỡng tôm penaeid bố mẹ: bài tổng kết cập nhật về nghiên cứu và phát triển Tài liệu tham khảo: Wouters, R., Lavens, P., Nieto, J., Sorgeloos, P., 2001 Penaeid shrimp broodstock nutrition: an updated review on research and development Aquaculture 202, 1-21 [PDF file] Tóm tắt Bài nầy tổng kết những kiến thức hiện nay về dinh dưỡng tôm biển bố mẹ với các tài liệu tham khảo đặc biệt về... lệ thấp các kết quả của điều tra mới đây về sự sử dụng thức ăn nhân tạo ở bán cầu phương Tây (Wouters et al., 2000b) được trình bày trong Bảng 5 Đa số các trại sản xuất giống đều dùng tôm L vannamei Điều tra cho biết rằng 80% trại sản xuất giống có bao gồm thức ăn nuôi vỗ nhân tạo trong chế độ cho ăn thường ngày Ước lượng trung bình chỉ có 16 % trong tổng chế độ cho ăn là được cấu tạo bởi thức ăn nuôi... al., 1994) Các mức độ tro được ghi trên nhãn kỹ thuật của các thức ăn thương mại cũng cho biết sự sử dụng các bổ sung khoáng chủ yếu (xem Bảng 1) Méndez et al (1997) kiểm tra thành phần khoáng chất của tôm mẹ L vannamei tự nhiên trước và sau một chu kỳ (sinh sản) trong trại giống Các con vật lấy mẫu ở cuối chu kỳ trong trại giống được giả định là đã bị kiệt sức Tôm mẹ kiệt sức cho thấy các mức độ calcium... tinh thí cao hơn ở con đực thành thục so với con đực đang phát triển Palacios et al (199b, 2000) một hàm lượng đạm trong trứng và gan khác nhau giữa con cái L vannamei ngoài tự nhiên và gia hóa có sức sinh sản lần hai rất cao và con cái có sức sinh sản lần hai trung bình Các hàm lương đạm trong gan tụy và buồng trứng của những con vật các sức sinh sản tốt nhất thì cao nhất một cách có ý nghĩa Tôm cái... bằng phospholipid, và để duy trì tần số sinh sản và sức sinh sản cao Cholesterol cũng là một lớp lipid quan trọng trong buồng trứng tôm biển thành thục (Middleditch et al., 1980; Teshima và Kanazawa, 1983; Mourente và Rodriguez, 1981; Ravid et al., 1999; Woulter et al., 1999b) Cholesterol phải được cung cấp qua thức ăn để cho sự tăng trưởng của các ấu thể tôm (D'Abramo, 1989), và được giả định là một... dinh dưỡng đối chứng vẹm tươi cho kết quả cao nhất về sức sinh sản và tỉ lệ nở, trội hơn so với các thức ăn nhân tạo có các mức độ n-3 HUFA tương tự như là vẹm Trong khi đó rõ ràng là HUFA có một vai trò chủ yếu trong sự sinh sản của tôm biển, nên nhớ rằng chất lượng của lipid thì không chỉ do thành phần acid béo của nó quyết định Thí dụ như chất lượng dinh dưỡng cao của mực cũng được quy cho hành phần . Chương IV Kỹ thuật sản xuất giống tôm biển nâng cao (Advanced technologies for shrimp larviculture) Cắt cuống mắt để kích thích tôm đẻ Eyestalk. về sự sinh sản trong điều kiện nuôi nhốt tôm biển. Kỹ thuật sinh sản nuôi nhốt đã được cung cấp cho vài loài, và các bài tổng kết đã được xuất bản do