Đang tải... (xem toàn văn)
Những đóng góp mới của luận án: Cây cọc rào (Jatropha curcas L.) thuộc họ Thầu dầu (Euphorbiaceae) hay còn gọi là cây dầu mè, có nguồn gốc từ Mexico, Trung Mỹ, sau đó được lan truyền sang châu Phi, châu Á. Cây cọc rào có tên trong từ điển những cây thuốc và vị thuốc Việt Nam. Cây có thể sinh trưởng ở những vùng đất cát khô hạn. Hạt cây cọc rào có hàm lượng dầu khoảng 30-40%, dầu thô từ hạt được chế biến thành dầu diesel sinh học (biodiesel) và nhiều sản phẩm giá trị khác như phân hữu cơ, thuốc trừ sâu sinh học, dược liệu. Hiện nay, nhiều nước trên thế giới đang chạy đua phát triển cây này, nhất là các nước Ấn Độ, Trung Quốc, Thái Lan, Malaysia, Indonesia, Philippines, Myanmar và nhiều nước châu Phi nhằm phục vụ nhu cầu năng lượng tại chỗ và xuất khẩu. Luận án nghiên cứu trên đối tượng cây cọc rào giống Ấn Độ. Giống này đã được nhập nội và khảo nghiệm từ đề tài: “Nghiên cứu tuyển chọn giống và công nghệ trồng cây dầu mè Jatropha curcas L. để sản xuất diesel sinh học góp phần giảm thiểu ô nhiễm môi trường thành phố” đã được thực hiện do Ban quản lý Khu Nông nghiệp Công nghệ cao thành phố Hồ Chí Minh chủ trì từ năm 2007 - 2010. của những cây cọc rào trưởng thành được thu nhận và sử dụng làm vật liệu trong nghiên cứu. Luận án đã xây dựng được quy trình vi nhân giống từ phôi soma cây cọc rào thông qua kỹ thuật nuôi cấy lớp mỏng tế bào lá. Đây là quy trình được xây dựng đầu tiên ở Việt Nam và có một vài điểm cải tiến so với những kết quả nghiên cứu trên thế giới. Theo quy trình vi nhân giống cây cọc rào bằng nuôi cấy phôi soma, sau 49 tuần (khoảng 1 năm) nuôi cấy, từ một mẫu lá non lấy từ cây bố mẹ thông qua chọn lọc, chúng ta có thể tạo ra được trên 5 triệu cây giống từ phôi soma. Cây giống này đảm bảo các tính năng: Ổn định di truyền so với cây đầu dòng, sạch bệnh, có rễ cọc giống cây con từ hạt. Đồng thời với hệ số nhân giống cao, quy trình này có thể đáp ứng được nhu cầu cây giống cọc rào trên quy mô canh tác lớn. Trong luận án này, các chất điều hòa sinh trưởng thực vật ngoại sinh được thay thế bằng một số acid amine và polyamine ở một số giai đoạn của quá trình phát sinh phôi soma trên cây cọc rào. Đây có thể được xem là tính mới của luận án so với những kết quả nghiên cứu trước đây. Kết quả của luận án là tiền đề cho những nghiên cứu chuyển gen mục tiêu vào cây cọc rào.
BỘ GIÁO DỤC VÀ ĐÀO TẠO BỘ NÔNG NGHIỆP VÀ PTNN VIỆN KHOA HỌC NÔNG NGHIỆP VIỆT NAM ĐỖ ĐĂNG GIÁP NGHIÊN CỨU SỰ PHÁT SINH PHÔI SOMA TỪ NUÔI CẤY LỚP MỎNG TẾ BÀO LÁ CÂY CỌC RÀO (Jatropha curcas L.) VÀ ỨNG DỤNG TRONG VI NHÂN GIỐNG LUẬN ÁN TIẾN SĨ NÔNG NGHIỆP TP HỒ CHÍ MINH – Năm 2016 MỞ ĐẦU Tính cấp thiết đề tài Vi c ng d ng c ng ngh sinh học nhi n li u hó thạch sản xuất nhi n li u sinh học th y th nguồn ng ngày cạn ki t hi n n y vấn ề qu n tâm Theo tài li u nghi n c u thực t sử d ng nhiều nước tr n th giới, nhi n li u sinh học chủ y u gồm: eth nol sinh học diesel sinh học Eth nol sinh học có th sản xuất từ nhiều nguồn nguy n li u khác nh u sắn, mí , ng , ậu tương, mỡ cá, diesel sinh học có th sản xuất từ cọc rào, cọ dầu, hoàng li n mộc, văn quan, bánh dầu, dừa Vi t N m, vi c sản xuất eth nol có nh ng hạn ch nh Di n tích ất n ng nghi p hạn hẹp n n khả mở rộng di n tích trồng nguy n li u có nhiều khó khăn, nguy n li u cho sản xuất eth nol sinh học ều nh ng lương thực chủ y u, làm th c ăn chăn nu i có li n qu n n n ninh lương thực cần phải xem xét c n trọng Hơn n , phát tri n mạnh củ vi c trồng sắn tr n ất dốc s gây r xói mòn ất (bồi lấp cử s ng, lòng hồ ập ) Cho n n, vi c nh hướng phát tri n diesel sinh học s có nhiều thuận lợi Trong số nh ng loài có khả sản xuất diesel sinh học cọc rào ược ý dễ trồng, bi n ộ sinh thái rộng, khả chống ch u tốt hàm lượng dầu hạt c o Chương trình phát tri n nhi n li u sinh học nói chung cọc rào nói ri ng nhận ược ủng hộ mạnh m củ Nhà nước Ngày 20 tháng 11 năm 2007, Thủ Tướng Chính Phủ r quy t phát tri n nhi n li u sinh học nh số 177/2007/QĐ ˗ TTg vi c ph t “Đề án n năm 2015, tầm nhìn n năm 2025” Ngày 19 tháng năm 2008, Bộ N ng nghi p Phát tri n N ng th n r quy t nh số 1842/QĐ˗BNN˗LN vi c ph t ề án “Nghi n c u, phát tri n sử d ng sản ph m cọc rào (Jatropha curcas L.) Vi t N m gi i oạn 2008 ˗ 2015 tầm nhìn n 2025” Hi n n y, giống cọc rào ược dùng phát tri n vùng nguy n li u chủ y u ược gieo từ hạt cành giâm M i phương th c sản xuất giống ều có ưu nhược i m nh Cây giống ược gieo từ hạt có giá thành thấp b phân ly cọc rào th phấn chéo nên khó ki m soát ược suất Cây giống ược sản xuất từ cành giâm kh ng ảm bảo tính ồng mặt di truyền Vì vậy, xu hướng gần ây, nhà kho học nghi n c u nhân giống theo quy trình kỹ thuật s u: (1) Nhân giống in vitro số ầu dòng tốt ược n chọn Nguy n li u nu i cấy b n ầu có th ỉnh sinh trưởng, chồi ngọn, chồi nách; (2) Trồng nh ng cấy m r ồng ruộng; (3) Chọn lọc lại nhân giống kỹ thuật nu i cấy ph i som từ nh ng nu i cấy m nói tr n tăng h số nhân giống làm hạ giá thành giống Phương pháp nu i cấy lớp mỏng t bào phương pháp mới, nghi n c u khả bi t hó củ t bào H thống t bào lớp mỏng với ặc tính mỏng có nhiều ưu i m qu n trọng tái thi t lập chương trình cho vi c tạo ph i som Sự thuận lợi củ phương pháp nghi n c u lớp mỏng t bào là: tần số phát sinh qu n c o, th i gi n cho k t ngắn N u chọn ược m i trư ng dinh dưỡng nồng ộ chất iều hò sinh trưởng thích hợp 100% mẫu cấy có phản ng Phương pháp nu i cấy lớp mỏng t bào phương pháp mới, nghi n c u khả bi t hó củ t bào Chỉ th phân tử ược phát tri n ng d ng từ ầu thập ni n 90 củ th kỷ XX Sự phát tri n ng d ng củ th phân tử xác nh sử d ng nh ng bi n ổi củ DNA bước phát tri n qu n trọng lĩnh vực di truyền chọn giống thực vật Cho n n y, nhiều loại th phân tử ược phát tri n vào sử d ng M i loại th ều có nguy n lý, kỹ thuật, phạm vi ng d ng khác nh u phù hợp cho m c ích nghi n c u khác nh u Trong số th phân tử, RAPD ược xem kỹ thuật tương ối ơn giản r tiền, ược ng d ng nghi n c u tính ổn nh di truyền củ giống nu i cấy m Trong phạm vi nghi n c u củ luận án, kỹ thuật RAPD ược sử d ng ánh giá ki m tr tính ổn nh di truyền củ cọc rào từ quy trình vi nhân giống Từ nh ng vấn ề n u tr n, luận án: “Nghiên cứu phát sinh phôi soma từ nuôi cấy lớp mỏng tế bào cọc rào (Jatropha curcas L.) ứng dụng vi nhân giống” ược thực hi n nhằm r phương pháp số lượng lớn cọc rào chất lượng c o, ổn dòng vi nhân giống hi u nh mặt di truyền so với ầu Mục tiêu - Nghi n c u phát sinh ph i som từ nu i cấy lớp mỏng t bào cọc rào - Xây dựng ược quy trình vi nhân giống hi u từ nu i cấy ph i som - Đánh giá m c ộ ổn ph i som nh di truyền cọc rào vi nhân giống tạo thành ược cảm ng từ m sẹo nu i cấy kỹ thuật lớp mỏng t bào làm sở cho vi c sản xuất giống in vitro Đối tƣợng phạm vi nghiên cứu Luận án nghi n c u tr n ối tượng cọc rào giống Ấn Độ Giống ược nhập nội khảo nghi m từ ề tài: “Nghiên cứu tuyển chọn giống công nghệ trồng dầu mè Jatropha curcas L để sản xuất diesel sinh học góp phần giảm thiểu ô nhiễm môi trường thành phố” ược thực hi n B n quản lý Khu N ng nghi p C ng ngh c o thành phố Hồ Chí Minh chủ trì từ năm 2007 - 2010 Lá củ nh ng cọc rào trưởng thành ược thu nhận sử d ng làm vật li u nghi n c u Phạm vi nghi n c u: + Sử d ng nh ng phương pháp nu i cấy m t bào thực vật xây dựng quy trình vi nhân giống cọc rào từ ph i som , + Sử d ng nh ng c ng c hi n ại ánh giá m c ộ ổn nh di truyền giống từ ph i som , + Sử d ng nh ng phương pháp giải phẫu m t bào thực vật qu n sát hình thái nghi n c u phát sinh hình thái Ý nghĩa khoa học thực tiễn a Ý nghĩa khoa học: - Đây hướng nghi n c u nu i cấy in vitro Vi t N m tr n ối tượng cọc rào - Đề tài óng góp số k t nghi n c u phát sinh hình thái, di truyền chọn giống vi nhân giống thân g b Ý nghĩa thực tiễn: - Từ quy trình vi nhân giống củ luận án có th sản xuất giống cọc rào ổn nh mặt di truyền, có suất hàm lượng dầu c o áp ng nhu cầu củ x hội - Một số cá nhân, qu n có nhu cầu nghi n c u có th sử d ng th m khảo quy trình c ng ngh vi nhân giống cọc rào từ k t củ luận án - Một số qu n nghi n c u, nh nghi p cần ược chuy n gi o quy trình c ng ngh vi nhân giống cọc rào từ k t củ luận án Những đóng góp luận án Luận án xây dựng ược quy trình vi nhân giống từ ph i som cọc rào th ng qu kỹ thuật nu i cấy lớp mỏng t bào Quy trình ảm bảo m c ti u có hi u suất nhân giống c o, ổn nh di truyền, chất lượng tốt Đây quy trình ược xây dựng ầu ti n Vi t N m có vài i m cải ti n so với nh ng k t nghi n c u tr n th giới Trong luận án này, chất iều hò sinh trưởng thực vật ngoại sinh ược th y th số cid mine poly mine số gi i oạn củ trình phát sinh ph i som tr n cọc rào Đây có th ược xem tính củ luận án so với nh ng k t nghi n c u trước ây K t củ luận án tiền ề nh ng nghi n c u chuy n gen m c ti u vào cọc rào Chƣơng TỔNG QUAN TÀI LIỆU VÀ CƠ SỞ KHOA HỌC CỦA ĐỀ TÀI 1.1 Tổng quan cọc rào 1.1.1 Vị trí phân loại Giới (regnum) : Plantae Ngành (divisio) : Embryophyt (thực vật có ph i) Lớp (class) : Sperm topsid (thực vật có hạt) Bộ (ordo) : M lpighi les (bộ sơ ri) Họ (f mili ) : Euphorbiaceae (thầu dầu) Chi (genus) : Jatropha (dầu mè, cọc rào) Loài (species) : Jatropha curcas Linn T n ti ng Anh : Physic nut T n ti ng Vi t : Dầu mè, cọc rào, dầu l i …[6] Tên Jatropha có nguồn gốc từ ti ng Hy Lạp, ghép từ hai ch Jatros (bác sĩ) Trophe (th c ăn) ám công d ng làm thuốc củ Curc s t n thư ng gọi cọc rào Malabar, Ấn Độ Tên thông d ng nước hi n Jatropha Vi t Nam, tùy theo phương, có nh ng tên gọi khác nh u như: Cọc giậu, ậu cọc rào, cọc rào, li, dầu mè (Võ Văn Chi, 1999; Nguyễn C ng Tạn, 2008) [6], [13] 1.1.2 Nguồn gốc phân bố Cọc rào (Jatropha curcas L.) có l ch sử 70 tri u năm, nguồn gốc từ Mexico (nơi có hóa thạch này) Trung Mỹ, ược ngư i Bồ Đào Nh n ảo Cape Verde, lan truyền s ng Châu Phi, Châu Á, s u ó ược trồng nhiều nước dần trở thành a hầu khắp nước nhi t ới, cận nhi t ới toàn th giới Hi n nay, cọc rào ược trồng nhiều nước như: Ấn Độ, Indonesia, Philippine, Trung Quốc, Vi t Nam, số ảo Thái Bình Dương Úc nhằm ph c v nhu cầu lượng ch xuất kh u (Lele, 2006; Nguyễn C ng Tạn, 2008) [111], [13] Vi t Nam, cọc rào n y có mặt từ sớm (từ trước th kỷ XIV) cho ược trồng rải rác nhiều n phương: Đ c Trọng, Bắc Ninh, Lạng Sơn, Ninh Thuận, Bình Thuận, Th nh Hó , Lào C i, Đồng Nai Thành phố Hồ Chí Minh (Nguyễn C ng Tạn, 2008) [13] 1.1.3 Đặc điểm sinh học 1.1.3.1 Đặc điểm hình thái Cọc rào b i g mềm, vỏ xám nhẵn Cây thư ng cao khoảng ˗ m với tán rộng, vòng i tr n 50 năm Trong iều ki n chăm sóc tốt, có th cao từ ˗ 10 m có th sống lâu Cành non mập mọng nước, nhựa có màu trắng s a hay màu vàng nhạt Cây rậm lá, to có màu xanh xanh nhạt, hình ovan hình trái tim, có ch n thùy Lá x p xen k nhau, ˗ ối x ng xoắn ốc quanh tr c (Lele, 2006; Nguyễn C ng Tạn, 2008) [111], [13] Hoa cọc rào mọc thành c m h y nách lá, thư ng hoa vào mùa hè khoảng tháng ˗ hàng năm Ho có kích thước nhỏ, màu vàng có mùi thơm Ho ực mọc ầu nhánh với cuống ngắn có khuỷu, hoa mọc gi a nh ng nhánh với nh ng cuống không khuỷu, ho lưỡng tính ực thư ng nhiều ho Ho ực có 10 nh nh vòng dính vào phần chân i xuất hi n Số lượng hoa ược chia thành vòng riêng bi t: , nh vòng k t lại thành bó Hoa thư ng r i rạc với bầu nh y hình elip có noãn với ầu núm nh y ch i (Lele, 2006; Nguyễn C ng Tạn, 2008) [111], [13] Quả mọc thành chùm có dạng n ng, kích thước (2,5 ˗ 4,0) cm Quả chia thành ngăn có ch a hạt Hạt chín có màu en, thu n dài, kích thước (2 × 1) cm, khối lượng khoảng 5,8 g (Lele, 2006; Nguyễn C ng Tạn, 2008) [111], [13] 1.1.3.2 Đặc điểm sinh thái Cọc rào loài có khả thích nghi c o Khi gặp hạn hán, thích ng cách r ng hầu h t làm giảm thoát nước Cây có th trồng loại ất Cây có khả ch u ược sương mù nhẹ th i gian ngắn Cây già khả ch u ựng tốt Tr i lạnh làm r ng Nhi t ộ thích hợp cho 18,0 ˗ 28,5°C Điều ki n Th i gian vòng tháng hạt nảy mầm khí hậu nóng m n năm có th kh i thác khoảng th i gian 40 năm (Lele, 2006; Nguyễn C ng Tạn, 2008) [111], [13] Nhu cầu nước cọc rào thấp Cây có th tồn ược với lượng mư trung bình năm từ 250 n 350 mm Vào nh ng tháng mù ng, cọc rào r ng hình thành lớp che phủ b n gốc giúp hạn ch thoát nước (Lele, 2006; Nguyễn C ng Tạn, 2008) [111], [13] Hình 1.1 Hình thái cọc rào a1: Cây cọc rào; b2: lá, c3: hoa, d4: quả, e5: mặt cắt hạt, f6: hạt Nguồn: http://shop.theplantattraction.com/Jatropha-Curcas-Tree-Bio-Diesel-Fuel-Source-Physic-Nut-5-Seeds-S-Jatropha-Curcas-5.htm http://www.alamy.com/stock-photo-physic-nut-jatropha-curcas-close-up-leaf-33120574.html http://biofuelstp.eu/oil_crops.html http://legalwealthcreation.com/2013/01/how-do-i-create-wealth-make-money-from-biodiesel-fuel-production-with-jatrophacurcas.html http://www.seedscollector.com/1000-jatropha-curcas physic-nut-s1000.html) https://en.wikipedia.org/wiki/Jatropha_curcas 1.1.4 Giá trị sử dụng 1.1.4.1 Trong điều trị bệnh Trong thành phần cọc rào, ngư i t phân tích ược nh ng hợp chất chủ y u terpen, fl von, coum rin, lipid, sterol, lk loid Nhiều phận củ có th ch b nh lá, vỏ cây, hạt rễ Rễ tr ti u vi m, cầm máu, tr ng ; dầu củ hạt có tác d ng nhuận tràng; d ch nhự trắng ti t r từ v t thương củ cành có th dùng ch b nh phong thấp, cơm; nước chi t từ có ch u răng, làm lành v t thương, ch tr b nh trĩ m n phytotoxin (curcin), chất có hạt cọc rào, n u ược nghi n c u sâu có th cung cấp cho chúng t loại dược li u 1.1.4.1 Cọc rào nhiên liệu sinh học Ngoài tác d ng tr b nh k tr n, cọc rào ược ý ặc bi t nguồn nguy n li u sản xuất nhi n li u sinh học Hạt củ có ộ m (6,62%), protein (18,2%), chất béo (38%), c rbohydr te (17,3%), sợi (15,5%) tro (4,5%) Dầu chi m 35 ˗ 40% hạt 50 ˗ 60% nhân hạt Trong dầu ch 21% cid béo kh ng b o hò Hạt ược x y ép lấy dầu dầu ược tách dung môi Dầu s u lọc ược sử d ng ng y nguồn nguy n li u sinh học dạng bổ sung, dầu cọc rào có th trộn với dầu thư ng với tỷ l l n lượng mới, n toàn, chi phí thấp, tái sinh ược, h n 20% Đây nguồn hẹn s nguồn lượng th y th cho thủy i n, dầu diesel, dầu lử , khí hó lỏng (LPG), th n, củi Nguồn lượng s giúp nước cắt giảm khoản tiền cho lượng phần xó i cân sử d ng lượng gi vùng Ưu i m khói từ dầu cọc rào mùi kh ng c y khói dầu hỏ kh ng lại mùi cho th c ăn s u nấu (Lele, 2006; Nguyễn C ng Tạn, 2008) [111], [13] 1.1.4.3 Bảo vệ môi trường Cọc rào lâu năm, tuổi thọ củ 50 năm phủ ất tốt, sinh trưởng phát tri n ược hầu h t loại ất xấu, nghèo dinh dưỡng, ất dốc, ất trơ sỏi Vì vậy, cọc rào ược trồng tr n vùng ất dốc s ược coi “lấp ầy” l hổng sinh thái vùng sinh thái xung y u miền núi, sớm tạo r thảm thực vật bề mặt dày ặc chống xói mòn, chống cháy, nâng c o ộ phì nhi u củ ất Kh ng nh ng vậy, có th trồng nh ng vùng ất s mạc hó , b i thải kh i thác khoáng sản, góp phần ph c hồi h sinh thái vùng này, tạo r hi u ng to lớn bảo v m i trư ng (Lele, 2006) [111] Cọc rào hấp th nhiều CO2 kh ng khí Theo tính toán sơ bộ, có khả hấp th 100 g CO2/ngày kh ng khí, tính r m i có khả hấp th 30 kg CO2/năm, m i h có th hấp th 48 CO2/năm, góp phần giảm thi u khí thải gây hi u ng nhà kính (Lele, 2006) [111] 1.1.4.4 Phân bón thức ăn gia súc S u ép dầu, b kh dầu có hàm lượng N 4,14 ˗ 4,78%; P2O5 0,50 ˗ 0,66%; CaO 0,60 ˗ 0,65%; MgO 0,17 ˗ 0,21% ược sử d ng làm phân h u tốt bón cho loại trồng, cho vùng sản xuất n ng nghi p h u cơ, n ng nghi p sạch, vừ góp phần sản xuất sản ph m sạch, vừ nâng c o ộ phì nhi u củ ất (Nguyễn C ng Tạn, 2008) [13] 1.1.5 Nhân giống cọc rào Nh ng nghi n c u nhân giống cọc rào tr n th giới Vi t N m hạn ch Cho n n y, phương pháp nhân giống cọc rào chủ y u theo phương pháp chuyền thống giâm cành gieo hạt Các phương pháp nhân giống hi n ại áp d ng tr n cọc rào phát tri n khoảng 10 năm trở lại ây 1.1.5.1 Phương pháp nhân giống truyền thống N m Phi, ngư i dân trồng cọc rào làm rào dậu trồng xói mòn bảo v chống ất Họ thư ng sử d ng phương pháp giâm cành ưu i m củ phương pháp nh nh chóng tạo ược trưởng thành Cành ược cắt từ cọc rào h i trưởng thành cắm xuống ất, n u ược chăm sóc c n thận s u khoảng n b tháng có ược ủ lớn em trồng Cây tạo r từ phương pháp giâm cành s u khoảng năm s bắt ầu cho Trồng kh i thác dầu lâu năm phương pháp nhân giống gieo hạt ược sử d ng nhiều Bởi nh ng nghi n c u giống giâm cành có r rằng, tạo thành từ nhân i sống ngắn hơn, khả chống hạn b nh tật ược nhân giống hạt Rễ củ giâm cành phát tri n y u, dễ b g y ổ (Heller, 1996) [85] Hạt trước em gieo ược lự chọn nh ng hạt to, chắc, m y Hạt ược ngâm nước qu m làm tăng tỷ l nảy mầm S u ó, hạt ược gieo vào bầu ất Hạt s nảy mầm s u khoảng tuần có th em i trồng 118 39 40 41 42 43 44 45 46 47 48 49 50 Compton M.E nd Mize C.W (1999), “St tistic l consider tions for in vitro research: I-Birth of n ide to collecting d t ”, In Vitro Cell Dev Biol Plant, 35, pp 115 – 121 Cornu A., Vuillaume E and Bodergat R (1981), Interet des variants cytoplasmiques en amelioration des plantes, In: Proc int symp induced mutation as a tool for crop improvement, International atomic energy agency, Vienna Correll D.S and Correll H.B (1982), Flora of the Bahama Archipelago,Food and Agriculture Organization Creissen G.P nd K rp A (1985), “K ryotypic ch nges in pot to pl nts regener ted from protopl sts”, Plant Cell Tissue and Organ Culture, 4, pp 171 – 182 Cvikrová M., Binarova´ P., Edera J., Va´gnera M., Hrubcova´ M., Zon´ J and M ch ´ckov ´ I (1999), “Effect of inhibition of phenyl l nine mmoni -lyase activity on growth of Alfalfa cell suspension culture: Alterations in mitotic index, ethylene production, and contents of phenolics, cytokinins, and poly mines”, Physiologia Plantarum, 107, pp 329 – 337 da Silva J.A.T and Nhut D.T (2003), Control of plant organogenesis: genetic and biochemical signals in plant organ form and development In: Nhut D.T., Le B.V., Tran Thanh Van K And Thorpe T (Eds.), Thin cell layer culture system: regeneration and transformation applications Kluwer Academic Publishers, the Netherlands, pp 65 – 133 Daigny G., Paul H., Sangwan R.S and Sangwan-Norreel B.S (1996), “F ctors influencing second ry som tic embryogenesis in M lus domestic Borkh”, Plant Cell Reports, 16, pp 153 – 157 D' m to F nd B yliss M.W (1985), “Cytogenetics of pl nt cell nd tissue cultures nd their Regener tes”, Critical Reviews in Plant Sciences, 3, pp 73 – 112 D tt M.M., Mukherjee P., Ghosh B nd Jh T.B (2007), “In vitro clonal propagation of biodiesel plant (Jatropha curcas L.)”, Current Science, 93, pp 1438 – 1442 Dehgan B and Webster G.L (1979), Morphology and infrageneric relationships of the genus Jatropha (Euphorbiaceae),Univ.Cal Publ Bot.,74, pp – 73 Delgado-Sanchez P., Saucedo-Ruiz M., Guzmán-Maldonado S.H., VillordoPineda E., González-Chavira M., Fraire-Velázquez S., Acosta-Gallegos J.A and Mora-Avilés A (2006), “An organogenic plant regeneration system for common bean (Phaseolus vulgaris L.)”, Plant Science, 170, pp 822 – 827 Dh ksh n moorthy D., Selv r j R., nd Chid mb r m A.L.A (2011), “Induced mutagenesis in Jatropha curcas L using gamma rays and detection of DNA 119 51 52 53 54 55 56 57 58 59 60 61 62 polymorphism through RAPD m rker”, Comptes Rendus Biologies, 334, pp 24 – 30 Do Dang Giap, Bui Van The Vinh, Nguyen Thi Kim Loan, Thai Xuan Du, Chu Thi Bich Phuong, Hoang Xuan Chien, Nguyen Phuc Huy, Tran Trong Tuan, Nguyen Dinh Lamand Duong Tan Nhut (2012), “Org nogenesis nd som tic embryogenesis from leaf transverse thin cell layers of Jatropha curcas L.”, Journal Biotechology, 10, pp 281 – 288 Ducos J.P., Zamarripa A., Eskes A and Pétiard V (1993), Production of somatic embryos of coffee in a bioreactor, In: (Ed) Proceedings of the 15th Colloquium of International Coffee Science Association, ASIC, pp 89 – 96 Dudits D., Gyugyey J., Bugre L and Bakó L., (1995), Molecular biology of somatic embryogenesis In: Thorpe T.A (Ed), In vitroEmbryogenesis in Plants Kluwer Academic Publisher, Dordrecht, pp 267 – 308 Dunstan D.I., Tautorus T.E and Thrope T.A., (1995), Somatic embryogenesis in woody plants In: Thorpe T.A (Ed), In vitro Embryogenesis in Plants, Kluwer Academic Publishers, Dordercht pp 471 – 538 Earle E.B and Gracen V.E (1985), Somaclonal variation in progeny of plants from corn tissue culture In: Henke R (Eds.) Progagation of Higher Plants through Tissue Culture Plenum, New York, pp 139 – 152 El‐Shiaty O.H., El‐Sharabasy S.F., and El‐K reim A.H.A (2004), “Effect of some amino acids and biotin on callus and proliferation of date palm (Phoenix dactylifera L.) Sewy cultiv r”, Arab Journal Biotechnology, 7, pp 265 – 272 Evans D.A., Sharp W.R and Medina-Filho (1984), “Somaclonal and g metoclon l v ri tion”, American Journal of Botany, 71, pp 759 – 774 Ev ns P.D (1981), “Multiple receptor types for octop mine in the locust”, Journal Physiology, 318, pp 99 – 122 Ev ns P.T nd M lmberg R.L (1989), “Do poly mines h ve roles in plant development?”, Annual Review of Plant Physiology and Plant Mo1ecular Biology,40, pp 235 – 269 Feirer R P., Wann S R and Einspahr D.W (1985), The effect of spermidine synthesis inhibitors on in vitro plant development, Plant Growth Regulation,3, pp 319 – 327 Fienberg A.A., Choi J.H., Lubich W.P nd Sung Z.R (1984), “Development l regulation of polyainine inetabolisin in growth and differentiation of carrot culture”, Planta, 162, pp 532 – 539 Finer J.J and Nagasawa A (1988), “Development of n embryogenic suspension culture of soybean (Glycine max (L.) Merr.)”, Plant Cell Tissue Org Cult, 15, pp 125 – 136 120 63 64 65 66 67 68 69 70 71 72 73 74 75 Flores H.E., Prot cio C.M nd Signs M.W (1989), “Prim ry nd second ry met bolism of poly mines in pl nts”, Recent Advances in Phytochemistry, 23, pp 329 – 393 Fujimur T nd Kom mine A (1975), “Effects of v rious growth regul tors on the embryogenesis in c rrot cell suspension culture”, Plant Science Letter, 5, pp 359 – 364 Fujimur T nd Kom mine A (1979), “Synchroniz tion of som tic embryogenesis in C rrot cell suspension culture”, Plant Physiology, 64, pp 162 – 164 Fukui K (1983), “Sequenti l occurrence of mut tions in growing rice c llus”, Theoretical and Applied Genetics, 65, pp 225 – 230 G h n P.B nd Bell ni L.M (1984), “Identificc tion of shoot pic l meristem cells committed to form vascular elements in Pisum sativumi L and Vicia faba L.”, Annals of Botany, 54, pp 837 – 841 Gamborg O.L., Miller R.A nd Ojim L (1968), “Nutrient requirements of suspension cultures of soybe n root cells”, Experimental Cell Research, 50, pp 151 – 158 Ganesh S.R., Parthiban K.T., Kumar R.S., Thiruvengadam V and Paramathma M., (2008), “Genetic diversity among Jatropha species as revealed by RAPD m rkers”, Genetic Resources and Crop Evolution, 55, pp 803 – 809 George E.F (1993), Plant propagation by tissue culture - Part 1, The technology, 2nd edn Exegetics, Eddington Gomez-Jimenez M.C, Paredes M.A., Gallardo M., Nieves F.G Enrique O and Sanchez-C lle I.M (2010), “Tissue-specific expression of oliveS-adenosyl methionine decarboxylase and spermidine synthase genes and polyamine met bolism during flower opening nd e rly fruit development”, Planta, 232, pp 629 – 647 Grimes H.D nd Hodges T.K (1990), “The inorg nic NO3: NH4 ratio influences plant regeneration and auxin sensitivity in primary callus derived from immature embryos of indica rice (Oryza sativa L.)”, Journal Plant Physiology, 136, pp 362 – 367 Grosser J.W., Gmitter F.G., Tus N nd Ch ndler J.L (1990), “Som tic hybrid plants from sexually incompatible woody species: Citrus reticulate and Citropsis gilleti n ”, Plant Cell Reports, 8, pp 656 – 659 Gupta P.K and Holmstrom D (2005), “Double St ining Technology For Distinguishing Embryogenic Cultures Protocol for Somatic Embryogenesis in Woody Plants”, Forestry Sciences, pp 573 – 575 Gupt R.C (1985), “Ph rm cognostic studies on “Dr v nti” P rt Jatropha curcas L.”, Plant Science, 94, pp 65 – 82 121 76 77 78 79 80 81 82 83 84 85 86 87 Gupta S., Srivastava M., Mishra G.P., Naik P.K., Chauhan R.S., Tiwari S.K., Kum r M nd Singh R (2008), “An logy of ISSR nd RAPD m rkers for comparative analysis of genetic diversity among different Jatropha curcas genotypes”, African Journal of Biotechnology, 7, pp 4230 – 4243 H dr mi I.E nd D'Auz c J (1992), “Effects of growth regul tors on polyamine content and peroxidase activity in Hevea brasiliensis c llus”, Annals of Botany, 69, pp 323 – 325 Halperin W (1970), Embryos from somatic plant cells, In: Helen P (Ed), Control Mechanisms in the Expression of Cellular Phenotypes, Symp Int Soc Cell boil., 9, pp 69 – 90 H nd A.K nd M ttoo A.K (2010), “Differenti l nd function l inter ctions emph size the multiple roles of poly mines in pl nts”, Plant Physiology and Biochemistry, 48, pp 540 – 546 H yter A.J (1986), “The m ximum f milywise error r te of Fisher’s le st signifi-c nt difference test”, Journal of the American Statistical Association, 81, pp 1001 – 1004 Heinz D.M., Krisshnamurti L., Nickel and Maretzki A., (1977), Cell, tissue and organ culture in sugarcane improvement In: Reinert J and Bajaj Y.P.S (Eds.), Applied and Fundamental Aspect of Plant Tissue and Organ Culture, SpringerVerlag, New York, pp 13 – 17 Heller J (1996), Physic nut Jatropha curcas L In: International Plant Genetic Resources Institute, Promoting the conservation and use of underutilized and neglected crops, Prom Underused Crops, 1, pp – 66 Heloir M.C., Fournioux J.C., Oziol L nd Bessis R (1997), “An improved procedure for the propagation in vitro of grapevine (Vitis vinifera cv Pinot noir) using xill ry bud cuttings”, Plant Cell Tissue and Organ Culture, 49, pp 223 – 225 Hilae A and Te-ch to S (2005), “Effects of c rbon sources nd strengths of MS medium on germination of somatic embryos of oil palm (Elaeis quineensis J cq.)”, Songklanakarin Journal of Science and Technology, 3, pp 629 – 635 Huy P.N nd Nhut D.T (2012), “In vitro morphogenic response of leaf explants of Kiwifruit (Actinidia deliciosa)”, Journal of Biotechnology, 10, pp 995 – 1003 Ikbal K., Boora S nd Dhillon R.S (2010), “Ev lu tion of Jatropha curacs L using RAPD m rkers”, Indian Journal of Biotechnology, 9, pp 50 – 57 Imai A., Matsuyama T., Hanzawa Y., Takashi A., Masanori T., Hikaru S., Yumiko S., Tomohiko K., Hiroaki H., Daisuke S., Satoshi T., Yoshibumi K nd T k h shi T (2004), “Spermidine synth se genes re essenti l for surviv l of Arabidopsis”, Plant Physiology, 135, pp 1565 – 1573 122 88 89 90 91 92 93 94 95 96 97 98 99 100 101 Ismidi nty D nd Esy nti R.R (2010), “F tty cid composition induced in somatic embryo of Jatropha curcas in biore ctor”, International Conference on Mathematics and Natural Sciences, pp 158 – 172 Jh T.B., Mukherjee P nd D tt M.M (2007), “Som tic embryogenesis in Jatropha curcas L., n import nt biofel pl nt”, Plant Biotechnology Reports, 1, pp.135 – 140 Joubert P.H., Brown J.M.M., H y I.T nd Seb t P.D.B (1984), “Acute poisoning with Jatropha curcas purging nut tree in children”, South AfricanMedicalJournal, 65, pp 729 – 730 Kaewpoo M and Te-ch to S (2009), “Influence of expl nts types nd plant growth regulators on multiple shoot formation from J curcas”, Science Asia, 35, pp 353 – 357 Kai G.Y., Dai L.M., Mei X.Y.and Zheng J.G (2008), “In vitro plantregeneration from leaf explants of Ophiorrhiza japonica”, Plant Biology, 52, pp 557 – 560 Kalimuthu K., Paulsamy S., Senthilkumar R and Sathya M (2007), “In vitro propagation of the biodiesel plant Jatropha curcas L.”, Plant Tissue Culture and Biotechnology, 17, pp 137 – 147 K r N.T nd Ari S (2008), “In vitro plant regeneration from embryogenic cell suspension culture of Astragalus chrysochlorus (Leguminose e)”, African Journal of Biotechnology, 7, pp 1250 – 1255 Kaur-S whney R., Shih L.M, Flores H.E nd G lston A.W (1982), “Rel tion of polyamine synthesis and titer to ging nd senescence in O t le ves”, Plant Physiology, 69, pp 405 – 410 Kemble R.J nd Shep rd J.F (1984), “Cytopl smic DNA v ri tion in pot to protoclon l popul tion”, Theoretical and Applied Genetics, 69, pp 211 – 216 Kevers C., G l N.L., Monteiro M., Dommes J nd G sp r T (2000), “Som tic embryogenesis of Panax ginseng in liquid cultures: a role for polyamines and their met bolic p thw ys”, Plant Growth Regulation, 31, pp 209 – 214 Knittel N., Escandon A.S and Hahne G (1991), “Pl nt regener tion t high frequency from m ture Sunflower cotyledons”, Plant Sciences, 73, pp 219 – 226 Kopertekh L.G nd Stribn y L.A (2003), “Pl nt regener tion from whe t le f expl nts”, Russian Journal of Plant Physiology, 50, pp 365 – 368 Kr nz E (1988), “Som tic embryogenesis in st tion ry ph se suspension cultures derived from hypocotyl protoplasts of Brassica napus L.”, Plant Cell Tissue and Organ Culture, 12, pp 141 – 146 Kumar R.V., Yogendra K., Tripathi, Shukla P., Ahlawat S.P and Gupta V.K (2009) “Genetic diversity nd rel tionships mong germpl sm of Jatropha curcas L reve led by RAPDs”, Trees, 23 pp 1075 – 1079 123 102 103 104 105 106 107 108 109 110 111 112 113 114 Kum r V., M kk r H.P.S nd Becker K (2010), “Detoxified Jatropha curcas kernel meal as a dietary protein source: Growth performance, nutrient utilization and digestive enzymes in common carp (Cyprinus carpio L.) fingerlings”, Aquaculture Niutrition, pp – 14 Kumari N., Jaiswal U.and J isw l V.S (1998), “Induction of som tic embryogenesis and plant regeneration from leaf callus of Terminalia arjuna Bedd”, Current Science, 75, pp 1052 – 1055 Kus no T., Berberich T., T ted C nd T k h shi Y (2008), “Poly mines: essential factors for growth nd surviv l”, Planta, 228, pp 367 – 381 L i F.M nd McKersie B.D (1993), “Effect of nutrition on m tur tion of alfalfa (Medicago sativa L.) som tic embryos”, Plant Science, 91, pp 87 – 95 Lansac A.R., Sullivan C.Y and Johnson B.E (1996), “Accumul tion of free proline in sorghum (Sorghum bicolor) pollen”, Canadian Journal of Botany, 74, pp 40 – 45 L rkin P.J nd Scowcroft W.R (1981), “Som clon l v ri tion - a novel Source of v ri bility from cell cultures for pl nt improvement”, Theoretical and Applied Genetics, 60, pp 197 – 214 Leal F., Loureiro J., Rodriguez E., Pais M S., Santos C and Pinto-Carnide O (2006), “Nucle r DNA content of Vitis vinifera cultivars andploidy level analyses of somatic embryo-derived plants obtainedfrom anther culture”, Plant Cell Reports, 25, pp 978 – 985 Leela T., Naresh B., Srikanth R.M., Madhusudhan N.C and Cherku P.D (2011), “Morphologic l, physico-chemical and micropropagation studies in Jatropha curcas L nd RAPD n lysis of the regener nts”, Applied Energy, 88, pp 2071 – 2079 Lee-St dlem nn O.Y., Lee S., H cket W.P nd Re d P.E (1989), “The formation of adventitious buds in vitro on micro – section of hybrid populus le f midveins”, Plant Science, 61, pp 263 – 267 Lele S (2006), Biodiesel and Jatropha Cultivation, Agrobios (India) Lin J., Jin Y., Zhou X nd W ng J (2010), “Molecul r cloning nd function l analysis of the gene encoding geranylgeranyl diphosphate synthase from Jatropha curc s”, African Journal of Biotechnology, 9, pp 3342 – 3351 Litz R.E nd Sch ffer B (1987), “Poly mines in dventitious nd som tic embryogenesis in mango (Marzgifera irzdica L.)”, Journal of Plant Physiology, 128, pp 251 – 258 LoSchiavo F., Pitto L., Giuliano G., Torti G., Nuti-Ronchi V., Marazziti D., Verg r R., Orselli S nd Terzi M (1989), “DNA methyl tion of embryogenic carrot cell cultures and its variations as caused by mutation, differentiation, hormones nd hypomethyl ting drugs”, Theoretical and Applied Genetics, 77, pp 325 – 331 124 115 116 117 118 119 120 121 122 123 124 125 126 Mahalakshmi R., Eg n th n P nd P rid A (2014), “In vitro regeneration from different ages of petioles of physic nut (Jatropha curcas L.)”, African Journal of Biotechnology, 13, pp 265 – 273 M lmberg R.L nd McIndoo J (1983), “Abnorm l for l development of tob cco mut nt with elev ted poly mine levels”, Nature, 305, pp 623 – 625 M rch nt R., D vey M.R., Luc s J.A nd Power J.B (1996), “Som tic embryogenesis and plant regeneration in Floribunda rose (Rosa hybrida L.) cvs Trumpeter nd Gl d Tidings”, Plant Science, 120, pp 95 – 105 M tthews H.R (1993), “Poly mines, chrom tin structure nd tr nscription”, Essays In Biochemistry, 15 (8), pp 561 – 566 Mattoo A.K., Chung S.H., Goyal R.K., Fatima T., Srivastava A., Solomos T nd H nd A.K (2007), “Over-accumulation of higher polyamines in ripening transgenic tomato fruit revives metabolic memory, upregulates anabolismrelated genes, and positively impacts nutritional quality”, Journal of AOAC International, 90 (5), pp 1456 – 1464 McClell M.T., Smith M.A.L nd C rothers Z.B (1990), “The effects of in vitro and ex vitro root initiation on subsequent microcutting root quality in three woody pl nts”, Plant Cell Tissue and Organ Culture, 23, pp 115 – 123 Mengoli M nd B gni N (1992), “Poly mines nd som tic embryogenesis in higher pl nts”, Plant Tissue Culture Letter, 68, pp – Merkle S.A (1995b), “Str tegies for de ling with limit tion of som tic embryogenesis in h rdwood trees”, Plant Tissue Culture and Biotechnology, 1, pp 112 – 121 Minoch R., M jumd r R., nd Minoch S.C (2014), “Poly mines nd biotic stress in pl nts: complex rel tionship”, Frontiers in Plant Science, 5, pp – 17 Minocha S C., Robic C A., Khan A J., Papa N., Samuelsen A I and Minocha R (1990), Polyainine and ethylene biochemistry in relation to somatic embryogenesis in carrot (Daucus carota L.) cell cultures In: Flores H.E., Arteca R.N and Shannon J.C (Eds.), Polyamines and ehtylen: biochemistry, physiology, and interaction,Plant Physiology, pp 339 – 342 Minoch S.C nd Minoch R (1995), “Role of poly mines in som tic embryogenesis In: Bajaj Y.P.S (Ed), Biotechnology in agriculture and forestry, Vol 30: Somatic embryogenesis and synthetic seed I, Heidelberg, Germany, pp 53 – 70 Mohamad A.J., Janagoudar B.S., Biradar D.P., Ravikumar R.L., Koti R.V and P til S.J (2009), “Genetic diversity n lysis of elite Jatropha curcas L genotypes using r ndomly mplified polymorphic DNA m rkers”, Karnataka Journal of Agricultural Sciences, 22, pp 293 – 295 125 127 128 129 130 131 132 133 134 135 136 137 Mont gue M.J., Koppenbrink J.W nd J wor ski E.G (1978), “Poly mine metabolism in embryogenic cells of Daucus carota I Changes in arginine dec rboxyl se ctivity”, Plant Physiology, 62, pp 430 - 433 Monteiro M., Kevers C., Dommes J nd G sp r T (2002), “A specific role for spermidine in the initiation phase of somatic embryogenesis in Panax ginseng CA Meyer”, Plant Cell, Tissue and Organ Culture, 68, pp 225 – 232 Mor dkh ni H (2012), “Investig tion of dventitious shoot regener tion from in vitro stem explants of Melissa officinalis L.”, Journal of Medicinal Plants Research, 6, pp 3217 – 3221 Mur shige T nd N k no R (1967), “Chromosome complement s determin nt of the morphogenic potenti l of tob cco cells”, American Journal of Botany, 54, pp 963 – 970 Mur shige T nd Skoog F (1962), “A revised medium for r pid growth nd bio ss ys with tob cco tissue cultures”, Physiologia Plantarum, 15, pp 473 – 497 MurchS.J., Victor J.M.R., Krishn r j S nd S xen P.K (1999), “The role of proline in thidiazuron-induced som tic embryogenesis of pe nut”, In Vitro Cellular & Developmental Biology Plant, 35, pp 102 – 105 Nagl W (1990), “Translocation of putrescine in the ovule, suspensor and embryo of Phaseolus coccineus J.”, Plant Physiology, 136, pp 587 – 591 Nambeesan S., Handa A.K and Mattoo A.K (2008), Polyamines and regulation of ripening and Senescence In: PaliyathG., MurrD.P., HandaA.K.and Lurie S (Eds.), Postharvest biology and technology of fruits, vegetables and flowers Blackwell Publishers, pp 319 – 340 Nhut D.T., da Silva J.A.T., Aswath C.R., Le B.V and Tran Thanh Van K (2003a), Biochemical and molecular markers in programmed plant differentiation and munipulation of the morphogenetic pathways in tobacco and lily by using TCL technique In: Nhut D.T., Le B.V., Tran Thanh Van K and Thorpe T (Eds.), Thin cell layer culture system: regeneration and transformation applications Kluwer Academic Publishers, the Netherlands pp 217 – 245 Nhut D.T., da Silva J.A.T., Le B.V and Tran Thanh Van K (2003b), Thin cell layer morphogenesis as a power tool in ornamental plant micropropagation and biotecnolgy In: Nhut D.T., Le B.V., Tran Thanh Van K and Thorpe T (Eds.), Thin cell layer culture system: regeneration and transformation applications Kluwer Academic Publishers, the Netherlands pp 247 – 284 Nhut D.T., Vinh B.V.T., Hien T.T., Huy N.P., Nam N.B and Chien H.X., (2012), “Effect of spermidine, proline and carbohydrate sources on somatic embryogenesis from main root transverse thin cell layers of Vietnamese 126 138 139 140 141 142 143 144 145 146 147 148 149 150 ginseng (Panax vietnamensis H et Grushv.)”, African Journal of Biotechnology, 11, pp 1084 – 1091 Nishi T and Mitsuoka S (1969), “Occurrence of v rious ploidy pl nts from nther nd ov ry culture of rice pl nt”, Japanese Journal of Genetics, 44, pp 341 – 346 Nitsch J.P nd Nitsch C (1969), “H ploid Pl nts from Pollen Gr ins”, Science, 163, pp 85 – 87 Norris R.E and Smith R.H (1981), “Regener tion of v rieg ted African violet (Saintpailia ionantha Wendl.) le f chimer s in culture”, Plant Physiology, 67, pp 117 Nuti-Ronchi V., Adelaide C.M., Nozzolini M and Luccarini G (1984), “Stimul tion of c rrot som tic embryogenesis by proline nd serine”, Plant Cell Reports, 3, pp 210 – 214 Obae G.S and West T.P (2010), “Nucle r DNA content of Hydrastis canadensis L and genome size stability of in vitro regener ted pl ntlets”, Plant Cell Tissue and Organ Culture, 102, pp 259 – 263 Ogit S., S s moto H., Yeung E.C nd Thorpe T.A (2001), “The effects of glutamine on the maintenance of embryogenic cultures of Cryptomeria japonica”,In Vitro Cellular and Developmental Biology Plant, 37, pp 268 – 273 Ogunsola K.E and Ilori C.O (2008), “In vitro propagation of miracle berry (Synsepalum dulcificum Daniel) through embryo nd nod l cultures”, African Journal of Biotechnology, 7, pp 244 – 248 Oono K (1982), Characteristics of mutation in cultured rice tissues, Food and Agricuture Organization Orton T.J (1984), “Studies on the inherit nce of resist nce to Fusarium oxysporum f sp apii in celery”, Plant Disease, 68, pp 574 – 578 P ndey A., T mt S nd Giri D (2011), “Role of uxin on dventitious root formation and subsequent growth of cutting raised plantlets ofGinkgo biloba L.”, International Journal of Biodiversity and Conservation, 3, pp 142 – 146 Philip V.J., Joseph D., Triggs G.S and Dickinson N.M (1992), “Micropropagation of black pepper (Piper nigrum Linn.) through shoot tip cultures”, Plant Cell Reports, 12, pp 41 – 44 Qiren C., Zhenhu Z nd Yu nhu G (1985), “Cytogenetic l n lysis on aneuploids obtained from pollenclones of rice (Oryza sativa L.)”, Theoretical and Applied Genetics, 71, pp 506 – 512 Rajam M.V (1997), Polyamines In: Prasad M.N.V (ed), Plant Ecophysiology New York: John Wiley & Sons, pp 343 – 374 127 151 152 153 154 155 156 157 158 159 160 161 162 163 R jore S nd B tr A (2007), “An ltern tive source for regener ble organogenic callus induction in Jatropha curcas L.”, Indian Journal of Biotechnology, 6, pp 545 – 548 Ram S.G., Parthiban K.T., Senthil Kumar R., Thiruvengadam V and P r m thm M (2007), “Genetic diversity mongJ troph species s reve led by RAPD m rkers”, Genetic Resources and Crop Evolution, 55, pp 803 – 809 Rival A., Beule T., Barre P., Hamon S., Duval Y and Noirot M (1997), “Comp r tive flow cytometric estim tion of nucle r DNA content in oil p lm (Elaeis guineesis Jacq.) tissue cultures and seed-derived pl nts”, Plant Cell Reports, 16, pp 884 – 887 Sacrist n M.D nd Melchers G (1960), “The c ryologic l n lysis of pl nts regener ted from tumorous nd other c llus culture of tob cco”, Molecular Genetics and Genomics, 105, pp 317 – 333 Saha M., Phatak A and Chandra N (2004), “In vitro culture studies in four dioecious varieties of Carica papaya L using axillary buds from field-grown pl nts”, Journal of Tissue Research, 4, pp 211 – 214 Santos M.A., Camara T., Rodriguez P., Claparols I and Torné J.M (1996), “Influence of exogenous proline on embryogenic and organogenic maize callus subjected to s lt stress”, Plant Cell Tissue and Organ Culture, 47, pp 59 – 65 Sara A nd Kh led (2011), “Effects of c sein hydrolys tes nd glut mine on callus and somatic embryogenesis of Date Palm (Phoenix dactylifera L.)”, New York Science Journal, 4, pp 121 125 Sch effer G.W (1982), “Recovery of herit ble v ri bility in nther-derived doubled-h ploid rice”, Crop Science, 22, pp 1160 – 1164 Schobert B (1977), “Is there n osmotic regul tory mech nism in algae and higher pl nts?”, Journal of Theoretical Biology, 68, pp 17 – 26 Serafini-Fracassini D and Mosseti U (1984), Free and bound polyamines in different stages of Helianthus tuberosus tuber In: Selmeci L., Brosnan M.E and Seiler N (Eds.), Recent Progress in Polyamine Research, Akademiai Kiad, Budapest, and VNU, The Nederlands, pp 551 – 560 Sharp W.R., Sondahl M.R., Caldas L.S and Maraffa S.B (1980), “The physiology of in vitro sexu l embryogenesis”, Horticultural Reviews, 2, pp 268 – 310 Shep rd J.F., Bidney D nd Sh hin E., (1980), “Pot to protopl sts in crop improvement”, Science, 208, pp 17 – 24 Shetty K (1997), “Biotechnology to h rness the benefits of diet ry phenolics; focus on L mi ce e”, Asia Pacific Journal of Clinical Nutrition, 6, pp 162 – 171 128 164 165 166 167 168 169 170 171 172 173 174 175 176 177 Shetty K nd As no Y (1991), “The influence of org nic nitrogen sources on the induction of embryogenic callus in Agrostis alba L.”, Plant Physiology, 139, pp 82 – 85 Shetty K nd McKersie B.D (1993), “Proline, thioproline nd pot ssium mediated stimulation of somatic embryogenesis in Alfalfa (Medicago sativa L.)”, Plant Science, 88, pp 185 – 193 Shi D.H., Kim J.S., Kim I.J., Y ng J., Chung G.C nd H n K.H (2000), “A short regeneration protocol effective on diverse genotypes of sunflower (Hellanthus Annuusl)”, In Vitro Cell, Dev Biol Plant, 36, pp 273 – 278 Shimizu K., N g ike H., Y buy T nd Ad chi T (1997), “Pl nt regener tion from suspension culture of Iris germanica”, Plant Cell Tissue and Organ Culture, 50, pp 27 – 31 Shriv st v S nd B nerjee M (2008), “In vitro clonal propagation of physic nut (Jatropha curcas L): influence of dditives”, International Journal of Integrative Biology, 3, pp 73 – 77 Singh B.B nd Gupt D.P (1983), “Proline ccumul tion nd rel tive w ter content in soybe n v rieties under stress”, Annals of Botany, 52, pp 109 – 110 Skub tz H., B sti n J D., Meeuse nd Arnold J.B (1989), “Oxid tion of proline and glutamate by mitochondria of the inflorescence of Voodoo lily (Sauromatum guttatum)”, Plant Physiology, 91, pp 530 – 535 Sliwinska E and Thiem B 2007 “Genome size st bility in six medicin l pl nt species propagated in vitro”, Plant Biology, 51, pp 556 – 558 Slocum R.D (1991), Tissue and subcellular localization of polyamines and enzymes of polyamine metabolism In: Slocum R.D and Flores H.E (Eds.), Biochemistry and physiology of polyamines in plants, Boca Raton, pp 23 – 40 Smith D.L nd Krikori n A.D (1989), “Rele se of som tic embryogenic potential from excised zygotic embryos of carrot and maintenance of proembryonic cultures in hormone-free medium”, American Journal of Botany, 76, pp 1832 – 1843 Son l S., Sh rm A., S rd n J., Sh rm M.M nd B tr A (2012), “Som tic embryogenesis Jatropha curcus L using cotyledon ry le ves”, Indian Journal of Biotechnology, 11, pp 348 – 351 Soomro R nd Memoom R.A (2007), “Est blishment of c llus nd suspension culture in Jatropha curcas”, Pakistan Journal of Botany, 39, pp 2431 – 2441 Stew rd C.N.J nd Vi L.E (1993), “A r pid CTAB DNA isol tion technique useful for RAPD fingerprinting nd other PCR pplic tions”, BioTechniques,14, pp 748 – 750 Stirpe F., Pession-Brizzi A., Lorenzoni E., Strocchi P., Montanaro L and Sperti S (1976), “Studies on the proteins from the seeds of Croton tiglium and of 129 178 179 180 181 182 183 184 185 186 187 188 189 190 191 Jatropha curcas Toxin properties and inhibition of protein synthesis in vitro”, Biochemical Journal, 156, pp – Stu rt D.A nd Strickl nd S.G (1984), “Som tic embryogenesis from cell cultures of Medicago sativa L The role of amino acid additions to the regener tion medium”, Plant Science Letters, 34, pp 165 – 174 Subr m ny m K., Mur lidh r r o D nd Dev nn N (2009), “Genetic diversity assessment of wild and cultivated varieties of Jatropha curcas L in Indi by RAPD n lysis”, African Journal Biotechnology,8, pp 1900 – 1910 Sugiyama M (1999), “Org nogenesis in vitro”, Plant Biology, 2, pp 61 – 64 Suj th M nd Mukt N (1996), “Morphogenesis nd pl nt regener tion from tissue cultures of Jatropha curcas”, Plant Cell Tissue and Organ Culture, 44, pp 135 – 141 Suj th M., M kk r H.P.S nd Becker (2005), “Shoot bud prolifer tion from axillary nodes and leaf sections of non-toxic J curcas L.”, Plant Growth Regulation, 47, pp 83 – 90 Sunderland N (1973), Pollen and another culture, pp 205 – 239, In: Street H.E., (Ed.),Plant Tissue and cell Culture Blackwell Scientific Publications, Oxford Sung Z.R and Okimoto R (2002), Embryonic proteins in somatic embryos of carrot, Proc Natl Acad Sci USA, 78, pp 3683 – 3687 Suprasanna P., Rao K.V and Reddy G.M (1994), “Embryogenic c llus in m ize: genotypic nd mino cid effects”, Cereal Research Communication, 22, pp 79 – 82 Swedlund B nd Locy R.D (1993), “Sorbitol as the primary carbon source for the growth of embryogenic c llus of m ize”, Plant Physiology, 103, pp 1339 – 1346 T k h shi T nd K kehi J.I (2010), “Poly mines: ubiquitous polyc tions with unique roles in growth nd stress responses”, Annals of Botany, 105, pp – T k y m S nd Akit M (1994), “The types of biore ctors used for shoots nd embryos”, Plant Cell Tissue and Organ Culture, 39, pp 147 – 156 T ylor C.B (1996), “Proline nd w ter deficit: ups nd downs”, Plant Cell, 8, pp 1221 –1224 Tetu T., Sangwan R.S and Sangwan–Noreel B.S (1990), “Direct som tic embryogenesis and organogenesis in cultured immature zygotic embryos of Pisum sativum L.” J Plant Physiol, 137, pp 102 – 109 Theiss C., Peter B nd Jürgen V (2002), “Regul tion by poly mines of ornithine decarboxylase activity and cell division in the unicellular green alga Chlamydomonas reinhardtii”, Plant Physiology, 128, pp 1470 – 1479 130 192 193 194 195 196 197 198 199 200 201 202 203 204 Theps mr n N., Thepsith r C nd Thongpukdee A (2006), “In vitro induction of shoots and roots from Jatropha curcas L expl nts”, Journal Horticultural Science and Biotechnology, 83, pp 106 – 112 Thom s T nd Thom s T.J (2001), “Poly mines in cell growth nd cell de th: molecul r mech nisms nd ther peutic pplic tions”, Cellular and Molecular Life Sciences, 58, pp 244 – 258 Tisi A., Federico R., Moreno S., Lucretti S., Moschou P.N., RoubelakisAngelakis K.A., Angelini R and Cona A (2011), “Perturb tion of poly mine c t bolism c n strongly ffect root development nd xylem differenti tion”, Plant Physiology, 157, pp 2258 – 2258 Torrey J.G (1966), The initiation of organized development in plant, Advances in Morphogenesis Torrigiani P., Bregoli A.M., Vanina Z.V and Guglielmo C.G (2008), “Molecul r nd biochemic l spects underlying poly mine modul tion of fruit development nd ripening”, Stewart Postharvest Reviwe, 2(10), pp – 12 Tr n Th nh V n K (1980), “Control of morphogenesis by inherent nd exogenously pplied f ctors in thin cell l yer”, International Review Cytology, 32, pp 291 – 311 Tran Thanh Van K (2003), Thin cell layer concept In: NhutD.T., Van L.B., Tran Thanh Van K.and Thorpe T.A.(Eds.), Thin cell layer culture system: Regeneration and Transformation Application, Kluwer Academic Publishers, Netherlands,pp – 12 Tr n Th nh V n K nd Gendy C (1996), “Thin cell l yer (TCL) method to progr mme morphogenetic p tterns”, Plant Tissue Culture Manual, 144, pp – 25 Tran Thanh Van K and Mutaffschiew V.S (1990), Signal influencing cell elongation, cell enlargement, cell division and morphogenesis In: Nijkam H.J.T.and Van Der Plas L.H.W (Eds.), Progress in Plant Cellular and Molecular Biology, Kluwer Academic Publishers, pp.514 – 519 Tr n Th nh V n M (1973), “In itro control of de novo flower, bud, root and differenti tion from excised epiderm l tissues”, Nature, 246, pp 44 – 45 Tr ore A nd Guiltin n M.J (2006), “Efects of c rbon sources nd exp lnt type on som tic embryogenesis of four C c o genotypes”, HortScience, 41, pp 753 – 758 Trigianno R.N and Conger B.V (1987), “Regul tion of growth nd som tic embryogenesis by proline and seriile in suspension cultures of Dactylis glomerata”, Journal Plant Physiology, 130, pp 49 – 55 Ur no K., Hobo T nd Shinoz ki K (2005), “Ar bidopsis ADC genes involved in poly mine biosynthesis re essenti l for seed development”, FEBS Letters, 579, pp 1557 – 1564 131 205 206 207 208 209 210 211 212 213 214 215 216 217 218 Van Staden J., Zazimalova E and George E.F (2008),Plant growth regulators II: Cytokinins, their analogues and antagonist In: George E.F., Hall M and De Kleck G.J (Eds.), Plant Propagation by Tissue Culture, 3rd edn The Netherlands, pp 205 – 226 Vanildo S., Balbuena T.S., Santa-Catarina, Floh E.I.S., Guerra M.P and H ndro W (2004), “Biochemic l ch nges during seed development in Pinus taeda L.”, Plant Growth Regulation, 44, pp 147 – 156 V ris i S.M., Sung J.M , Jeng T.L nd W ng C.S (2004), “Optimiz tion of somatic embryogenesis in suspension cultures of horsegram Macrotyloma uniflorum (L m.) Verdc h rdy gr in legume”, Scientia Horticulturae, 106, pp 427 – 439 Venek mp J.H nd Koot J.T.M (1984), “The distribution of free mino cids, especially of proline, in the organs of field bean plants, Vicia faba L., during development in the field”, Journal Plant Physiology, 116, pp 343 – 349 Victoria N.R., Maria A.C., Mauro N and Gualtiero L (1984), “Stimulation of c rrot som tic embryogenesis by proline nd serine”, Plant Cell Reports, 3, pp 210 – 214 Vikrant A and R shid A (2002), “Som tic embryogenesis from imm ture nd mature embryos of a minor millet Paspalum scrobiculatum L.”, Plant Cell Tissue and Organ Culture, 69, pp 71 – 77 Vries H.D and Boedijn K (1901), Die Mutationstheorie, Veit, Leipzig 648 Wallace H.M (2009), “The poly mines: p st, present nd future”, Essays In Biochemistry, 46, pp – Wallsgrove R.M (1995), Amino acids and their derivatives in higher plants, Cambridge University Press, Cambridge Wang Y., Ruemmele B., Chandlee J., Sullivan M., Knapp J and Kausch A (2002), “Embryogenic c llus induction nd pl nt regener tion medi for Bentgr sses nd nnu l Bluegr ss”, In Vitro Cellular & Developmental Biology Plant, 38, pp 460 – 467 W r k god P.S nd Sub singhe S (2009), “Shoot proliferation of Jatropha curcas L.”, Tropical Agricultural Research and Extension, 12, pp 77 – 80 Wei Q., Lu W.D., Liao Y., Pan S.L., Xu Y., Tang L and Chen F (2004), “Plant regeneration from epicotyl explant of Jatropha curcas”, Physiology and Molecular Biology of Plant, 30, pp 475 – 478 Willi ms E.G nd M hesw r n C (1986), “Som tic embryogenesis: f ctors influencing co-ordin ted beh viour of cells s n embryogenic group”, Annals of Botany, 57, pp 443 – 462 Williams J.G.K., Kubelik A.R., Livak K.J., Rafalski J.A and Tingey S.V (1990), “DNA polymorphisms mplified by rbitr ry primers re useful s genetic m rkers”, Nucleic Acids Research, 18, pp 6531 – 6535 132 219 220 221 222 Woo S.C and Chen C.C (1982), Rice another culture in Taiwan In: Rice tissue cult planning conf IRRI Los Banos, pp 83 – 90 Zainudina A., Maftuchahaand Fitri nib H (2014), “An lysis of genetic diversity on mutants Jatropha curcas using RAPD”, Energy Procedia, 47, pp – Zh ng L., K i G.,Xu T., Pi Y., Zh ng H., Sun X nd T ng K (2004), “Efficient regeneration of tetraploid Isatis indigotica plants via adventitious organogenesis from hypocotyl expl nts”, Biologia Plantarum, 48, pp 121 – 124 Zimmerm n J.L (1993), “Som tic embryogenesis: model for e rly development in higher pl nts”, Plant Cell, 5, pp 1411 – 1423 TÀI LIỆU INTERNET 223 Biofuelsdigest.com ... Nghiên cứu phát sinh phôi soma từ nuôi cấy lớp mỏng tế bào cọc rào (Jatropha curcas L.) ứng dụng vi nhân giống ược thực hi n nhằm r phương pháp số lượng lớn cọc rào chất lượng c o, ổn dòng vi. .. truyền cọc rào vi nhân giống tạo thành ược cảm ng từ m sẹo nu i cấy kỹ thuật lớp mỏng t bào làm sở cho vi c sản xuất giống in vitro Đối tƣợng phạm vi nghiên cứu Luận án nghi n c u tr n ối tượng cọc. .. ổn dòng vi nhân giống hi u nh mặt di truyền so với ầu Mục tiêu - Nghi n c u phát sinh ph i som từ nu i cấy lớp mỏng t bào cọc rào - Xây dựng ược quy trình vi nhân giống hi u từ nu i cấy ph i som