Đang tải... (xem toàn văn)
Theo dõi quy trình nuôi tảo làm thức ăn cho ấu trùng cá biển
PHẦN I. LỜI MỞ ĐẦU Việt Nam có lợi thế về diện tích mặt nước nuôi trồng thủy sản, tuy vậy khả năng ứng dụng chưa cao. Từ trước những năm 1970, chúng ta chủ yếu tập trung khai thác mà chưa thực sự quan tâm tới chính sách phát triển và bảo vệ nguồn lợi tự nhiên. Những năm gần đây cùng với chính sách hỗ trợ của nhà nước, ngành đã có những bước phát triển quan trọng với quy mô ngày càng lớn và diện tích ngày càng được mở rộng. Trong xu thế phát triển sản xuất thì nhu cầu con giống ngày càng tăng và cần được giải quyết. Ngày nay, cùng với sự phát triển của khoa học – kỹ thuật nhiều loài cá kinh tế, đặc biệt là các loài cá biển đã được sản xuất giống nhân tạo thành công. Công nghệ sản xuất giống bao gồm những giải pháp kỹ thuật quan trọng, trong đó vấn đề thức ăn và cách cho ăn khi ương ấu trùng cá là khâu then chốt quyết định sự tăng trưởng và tỷ lệ sống của ấu trùng trong suốt quá trình biến thái. Tảo là thức ăn có giá trị dinh dưỡng lớn, đặc biệt là protein (chiếm 50 – 60 % trọng lượng khô), tiếp đó là lipid, hiđrocacbonat, các xit béo. Đã có nhiều nghiên cứu về dinh dưỡng các đối tượng nuôi và mặc dù đã sản xuất nhiều thức ăn nhân tạo cho ấu trùng của cá, tôm cũng như các đối tượng nuôi hải sản khác, nhưng không có loại thức ăn nào có thể so sánh được với thức ăn tự nhiên. G.G.Vinbe (1965) đã đánh giá vai trò của tảo: “Không có tảo thì không có nghề cá”.Đúng vậy tảo là mắt xích đầu tiên trong chuỗi thức ăn ở môi trường biển, là thức ăn cần thiết cho tất cả các giai đoạn trong ương nuôi các loài nhuyễn thể hai mảnh vỏ (Hàu, Ngao, Điệp), giai đoạn ấu trùng của các loài động vật chân bụng và ấu trùng của một số loài cá biển và tôm He … hoặc có thể là thức ăn gián tiếp cho ấu trùng các loài trên thông qua zooplankton (luân trùng, giáp xác chân chèo, artemia). Vi tảo còn được nuôi trực tiếp trong các bể ương nuôi ấu trùng cá biển trong “ kỹ thuật nước xanh” với vai trò làm ổn định chất lượng nước, dinh dưỡng ấu trùng và kiểm soát vi khuẩn. Vì thế nhân sinh khối tảo luôn là công đoạn không thể thiếu trong các trại nuôi trồng thủy sản. Bên cạnh những nghiên cứu về tầm quan trọng của vi tảo thì việc nghiên cứu các kỹ thuật nuôi trồng cho chất lượng tốt, năng suất sinh khối lớn cũng được nhiều người quan tâm và chú ý phát triển. Nhằm bổ sung kiến thức thực tế, kết hợp lý thuyết với thực tiễn sản xuất, tôi được trường phân công và trung tâm chấp nhận cho làm chuyên đề : “Theo dõi quy trình nuôi tảo làm thức ăn cho ấu trùng cá biển”. Với mục tiêu là nắm vững kỹ thuật giữ giống, nuôi sinh khối, thu được năng suất cao trong sản xuất và chủ động trong việc cung cấp thức ăn phục vụ cho sản xuất giống cá biển. Chuyên đề gồm có hai nội dung chính + Kỹ thuật lưu giữ giống tảo. + Kỹ thuật nuôi sinh khối. 1 Vũng Tàu, tháng 7 năm 2006 Sinh viên thực hiện Đào thị Hằng PHẦN II. TỔNG QUAN TÀI LIỆU 2.1 Sơ Lược Về Tình Hình Nuôi Và Sử Dụng Một Số Loài Vi Tảo Trên Thế Giới Và Việt Nam 2.1.1 Trên thế giới Việc nghiên cứu tảo có từ lâu đời, nó gắn liền với sự ra đời của Kính hiển vi quang học và việc tìm thấy tế bào đầu tiên do nhà tự nhiên học người Anh R.Hooke vào năm 1665. Tuy nhiên, mãi đến năm 1910, Allen và Nelson lần đầu tiên nuôi tảo Silic để làm thức ăn cho một số động vật không xương sống (Ryther và Goldman, 1975). Năm 1939, Bruce và cộng tác viên đã phân lập và nuôi tảo đơn bào Isochrysis galbana và Platymonas grossii để nuôi ấu trùng Hàu. Năm 1940, Matsue phát triển phương pháp phân lập và nuôi thuần Skeletonema costatum dùng làm thức ăn cho ấu trùng tôm Penaeus japonicus ở giai đoạn zoea đạt tỷ lệ sống 30 % (thay vì trước đó chỉ đạt 1 %) (Liao,1983). Ở Mỹ Chlorella được bắt đầu sản xuất đại trà năm 1950, (Đặng Đình Kim, 1999). Năm 1953, các nhà khoa học (Tây Đức) đã sử dụng khí thải CO 2 của nhà máy công nghiệp vùng Rubin để nuôi trồng tảo Chlorella sp và Scenedesmus acutus. Cũng loài tảo này, năm 1957, Tamiya và cộng sự ở viện sinh học Tokugama (Tokyo) đã công bố kết quả nuôi trồng tảo Chlorella ở ngoài trời và cũng từ Chlorella họ chiết ra một hợp chất gọi là “nhân tố sinh trưởng Chlorella” cùng với 15 loài Vitamin khác nhau, được ứng dụng rộng rãi trong y học (Võ Hành, 1996). Năm 1960, Scenedesmus được sản xuất đại trà ở Tiệp Khắc, Đức, Israel, Italia và một số nước Đông Âu, đồng thời tảo Lam Spirulina được trồng đại trà ở Mêhico, Mỹ, Đài Loan, Israel, Trung Quốc, Thái Lan, Ấn Độ và Việt Nam (Đặng Đình Kim, 1999). Năm 1996 – 1997, Nhật Bản đã sản xuất tảo Chlorella đạt sản lượng 1 100 tấn/năm và Trung Quốc sản xuất 2 798 tấn/năm tảo Spirulina để xuất khẩu (Yuan – Kun Lee, 1997). 2.1.2 Ở Việt Nam 2 Đầu những năm 1960 giáo sư Nguyễn Hữu Thước và các cộng sự đã tiến hành nhiều thí nghiệm sử dụng sinh khối Chlorella vào thức ăn một số loài gia cầm, kích thích tăng trưởng của tằm con (Đặng Đình Kim, 1999). Những năm đầu 1970, sản xuất giống Hải Sản bắt đầu được quan tâm, trạm nghiên cứu nuôi trồng thủy sản nước lợ Quý Kim – Hải Phòng đã kết hợp thu nuôi sinh khối tảo Silic làm thức ăn cho ấu trùng tôm mang tính chất phục vụ sản xuất là chính đồng thời tiến hành một số thí nghiệm nghiên cứu cơ bản. Năm 1974 một số thí nghiệm nuôi tảo Skeletonema costatum trong điều kiện phòng thí nghiệm được tiến hành ở trường Đại học Thủy Sản Nha Trang. Cũng loài tảo này năm 1989 tại trung tâm nghiên cứu thủy sản III, Nguyễn Thị Xuân Thu và các cộng tác viên đã tiến hành một số thí nghiệm về môi trường nuôi cấy tìm hiểu khả năng phát triển của Skeletonema costatum và Chaetoceros sp, sử dụng Skeletonema costatum để ương ấu trùng tôm sú ở giai đoạn Zoea (Lê Viên Chí, 1996). Cũng trong thời gian này, liên doanh Việt Nam – Oxtrâylia về sản xuất tôm giống, sử dụng Skeletonema costatum làm thức ăn cho ấu trùng đạt kết quả tốt (Đặng Đình Kim,2000). Năm 1996, Lê Viễn Chí nghiên cứu một số đặc điểm sinh học, công nghệ nuôi tảo Silic Skeletonema costatum (Greville) Cleve làm thức ăn cho ấu trùng tôm biển. Trần Thị Tho và cộng sự (2000) đã tiến hành những thí nghiệm nuôi đại trà Chlorella pyrenoidosa tại bể 10 m 3 đối với môi trường đạm vô cơ có bổ sung hữu cơ (0.4% bột cá) và dịch chiết đất (1%) (Đặng Đình Kim, 2002). 2.2 Vai Trò Của Thực Vật Nổi Trong Nuôi Trồng Thủy sản Mặc dù các nghiên cứu về tảo được tiến hành muộn hơn các lĩnh vực khác trong ngành nuôi trồng thủy sản nhưng với những gì đã ngiên cứu được cho thấy tảo có vai trò hết sức quan trọng trong thành công của lĩnh vực sản xuất giống và nuôi thương phẩm hầu hết các đối tượng nuôi trồng thủy sản. Tảo là thức ăn là thức ăn trực tiếp cho ấu trùng cá, tôm, động vật thân mềm hai mảnh vỏ. Các nhà khoa học Việt Nam đã tiến hành thử nghiệm đưa tảo Spirulina sinh khối vào thức ăn của cá Mè Trắng, Trắm Cỏ, Rô Phi với tỷ lệ 5% đã làm tăng tỷ lệ sống và tăng trưởng của cá. Tảo còn được dùng để sản xuất khối lượng lớn các động vật phù du (luân trùng, động vật chân chèo, artemia). Các động vật phù du này lại được dùng làm thức ăn cho các giai đoạn ấu trùng của một số loài tôm, cá. Ngoài ra, trong các bể ương ấu trùng cá biển, tảo còn có vai trò ổn định chất lượng nước và kiểm soát vi khuẩn. Bên cạnh vai trò làm thức ăn cho động vật thủy sản, tảo còn sản xuất ra lượng lớn khí ôxi hoà tan vào ban ngày (khi tảo quang hợp) góp phần làm ổn định nhiệt độ và pH trong môi trường của các ao, hồ khi tiến hành nuôi chung với động vật thủy sản. 3 Một số loài tảo như Chlorella ở Nhật Bản được đóng viên và sử dụng như một loại thức ăn bổ dưỡng cho người (Đặng Đình Kim, 2000). Sử dụng Chlorell, Scenedesmus, Spirulina vào khẩu phần thức ăn của gà với tỷ lệ 7,5 – 10% làm tăng tỷ lệ đẻ và hàm lượng vitamine A trong trứng (Đặng Đình Kim, 2000). Ngoài ra, tảo còn được sản xuất đại trà để chiết suất các hoạt chất như : Vitamine, lipid, các sắc tố (carotenoit, chlorophyll( a,b,c1,c2), phycobiliprotein), cacbohydrat, một số chất chống ôxi hoá. Một số loài tảo Lam có khả năng cố định đạm từ Nitơ không khí và có vai trò quan trọng trong chu trình biến đổi nitơ nên tảo Lam là loại phân bón sinh học rất tốt cho cây trồng. Tảo cũng là phương tiện làm sạch nước thải có hiệu quả với giá thành thấp nhất (Đặng Đình Kim, 1999). Nói chung tảo có số lượng loài rất lớn, đã được nghiên cứu và ứng dụng rộng rãi trong dinh dưỡng, công nghiệp, y tế, thủy sản, nông nghiệp và bảo vệ môi trường. Tuy vậy, các hướng nghiên cứu sản xuất đại trà một số loài tảo lại chủ yếu phục vụ cho sản xuất giống và nuôi động vật thủy sản. Bảng 1 Các lớp và giống vi tảo chủ yếu được nuôi trồng dùng cho nuôi thủy sản (đã sửa đổi từ tài liệu của De Pauw và Persoone, 1998) Lớp Giống Những thí dụ về áp dụng Bacillariophyceae Skeletonema PL,BL,BP Thalassiosira PL,BL,BP Phaeodactylum PL,BL,BP,ML,BS Chaetoceros PL,BL,BP,BS Cylindrotheca PL Bellerochea BP Actinocyclus BP Nitzchia BS Cyclotella BS Haptophyceae Isochrysis PL,BL,BP,ML,BS Pseudoisochrysis BL,BP,ML Dicrateria BP Chrysophyceae Monochrysis (Pavlova) BL,BP,BS,MR Prasinophyceae Tetraselmis (Platymonas) PL,BL,BP,AL,BS,MR Pyramimonas BL,BP Micromonas BP 4 Crytophyceae Chroomonas BP Cryptomonas BP Rhodomonas BL,BP Cryptophyceae Chlamydomonas BL,BP,FZ,MR,BS Chlorococcum BP Xanthophyceae Olisthodiscus BP Chlorophyceae Carteria BP Dunaliella BP,BS,MR Cyanophyceae Spirulina PL,BP,BS,MR PL: ấu trùng tôm he Panaeid BL: ấu trùng nhuyễn thể hai mảnh vỏ ML: ấu trùng tôm nước ngọt BP: hậu ấu trùng nhuyễn thể hai mảnh vỏ AL: ấu trùng bào ngư; MR: luân trùng biển (Brachionus) BS: tôm đồng muối (Artemia) SC: động vật chân chèo nứoc mặn; 2.3 Giá Trị Dinh Dưỡng Của Vi Tảo Tảo là nguồn bổ sung dinh dưỡng rất quan trọng của động vật thủy sản, là thức ăn không thể thiếu ở tất cả các giai đoạn của các loài nhuyễn thể hai mảnh vỏ. Mặc dù có những khác biệt trong thành phần sinh hoá của các lớp và các loài tảo nhưng Protein luôn là thành phần hữu cơ chủ yếu (chiếm 12 – 35% trọng lượng khô của vi tảo), tiếp đó là Lipid (7.2 – 23%) rồi đến Cacbohidrate (4.6 – 23%), (Brown, 1991). Hàm lượng các axít béo không no (HUFA), đặc biệt là axít eicosapentaenoic (20:5n-3, EPA), axít arachidonic (20:4n-6, ARA) và axít docosahexaonic (22:6n-3, DHA) đóng vai trò quan trọng chủ yếu trong việc đánh giá thành phần dinh dưỡng của một loài tảo dùng làm thức ăn cho các sinh vật biển. Nồng độ quan trọng của axít eicosapentaenoic (EPA) đều có mặt ở các loài tảo khuê (Chaetoceros calcitraans, C.gracilic, S.costatum, T.pseudonana) và tảo Platymonas sp và tảo Chroomonas salina (Volkman và cs, 1989). Các vi tảo còn được coi là nguồn giàu axít ascorbic (0.11 – 1.62% trọng lượng khô). Giá trị dinh dưỡng của tảo có thể biến đổi đàng kể theo môi trường nuôi. Thí dụ ảnh hưởng của thành phần của môi trường nuôi lên thành phần gần đúng của các loài vi tảo khác nhau (Brown và Miller, 1992). Hàm lượng Protein trong mỗi tế bào vẫn được xem làmột trong những yếu tố quan trọng nhất quyết định giá trị dinh dưỡng của vi tảo dùng làm thức ăn trong nuôi trồng thủy sản. Protein cũng được chứng minh là thành phần nhạy cảm nhất với những biến động của môi trường nuôi hơn những thành phần cấu tạo tế bào khác. Bảng 2 Thành phần sinh hóa của một số loài tảo 5 Loài tảo Hàm lượng các chất (% trọng lượng khô) Protein Lipid Carbohydrat Tham khảo Spirulina platensis 46 – 50 4 – 9 8 – 14 Tipnis (1960) S. platensis 62.5 3 8.5 Becker (1984) S. maxima 65 2 20 Miller (1968) S. maxima 60 – 71 6 – 7 13 –16 Duran (1980) Chlorella vulgaris 51 – 58 14 – 12 12 – 17 Trubachev (1976) C. pyrenoidosa 57 2 26 Aaroson (1980) Scenedesmus obliquus 50 – 56 12 – 14 10 – 17 Soeder (1981) S. obliquus 52 9 12.5 Becker (1984) S. quadricauda 47 1.9 Hindak (1968) Dunadiella salina 57 6 32 Parson (1961) D. bioculata 49 8 4 Eddy (1956) Euglena gracilis 39 – 61 14 – 20 14 – 18 Collyer (1955) Skeletonema sp 37 4.7 20.8 Parson (1961) Chaetoceros sp 35 6.9 66 Parson (1961) Nanochloropsis oculata 35 18 7.8 Brow(1991) Tetrselmis chui 31 10 12 Brow(1991) Isochrysis galbana 20 23 12.9 Brow(1991) Tuy nhiên, tốc độ sinh trưởng của các vật cho ăn bằng hỗn hợp các loài tảo khác nhau thường cao hơn các vật chỉ được cho ăn bằng một loại tảo. Một loài tảo cá biệt có thể thiếu một chất dinh dưỡng, trong khi một loài tảo khác có thể chứa chất dinh dưỡng đó và thiếu chất dinh dưỡng khác. Do đó hỗn hợp cả hai loài tảo sẽ cung cấp cho các động vật một lượng đầy đủ gồm cả hai chất dinh dưỡng. Việc xem xét chung các khía cạnh dinh dưỡng của các vi tảo được sử dụng trong nuôi biển các loài nhuyễn thể hai mảnh vỏ, giáp xác và cá được trình bày trong tài liệu của Brown và các tác giả khác (1989). Liao, 1983 cho rằng “không có loài tảo đơn độc nào lại tốt nhất về mọi phương diện cho việc nuôi và sử dụng chúng làm thức ăn cho động vật thủy sản”, nhưng hiện nay phương pháp sử dụng chỉ một loài tảo duy nhất vẫn là phương pháp chủ yếu trong nuôi trồng. 2.4 Sơ Lược Về Đặc Điểm Sinh Học Của Một Số Loài Tảo Nuôi 2.4.1 Chlorella Tảo Chlorella thuộc ngành tảo lục (Chlorophyta), là tảo đơn bào, tế bào hình cầu hoặc hình ô van, không có tiên mao, không có khả năng di động chủ động, kích thước tế bào từ 5 – 7 µm tùy loài, tùy điều kiện nuôi và giai đoạn phát triển của tảo. Chlorella phân bố rộng có thể sống ở độ mặn từ: 5 – 30 ‰, nhiệt độ: 15 – 35 0 C, pH: 7.5 – 8.5. Tại nơi có nguồn chất thải hữu cơ tảo phát triển đạt mật độ 50 x 10 6 tb/ml (Đặng 6 Đình Kim, 1999). Thành phần hoá học của Chlorella phụ thuộc vào sự có mặt của Nitơ trong môi trường, khi đói đạm hàm lượng prôtêin giảm đi rõ rệt trong khi lượng Cabohyđrat và axít béo lại tăng đáng kể. Đây là thức ăn tốt cho Brachionus plicatilis và ấu trùng tôm cá. (Hình 1). 2.4.2 Nannochloropsis oculata Tảo Nanochloropsis oculata giống Chlorella nhưng kích thước bé hơn. Nanochloropsis oculata phát triển tốt trong môi trường dinh dưỡng Walne (là môi trường được bổ sung vitamin B 1 và B 12 ), ở độ mặn 18 – 26 ‰, nhiệt độ 25 0 C và mật độ nuôi cấy ban đầu là 2 x 10 6 tb/ml (Vũ Dũng, 1998). Sinh trưởng và phát triển nhanh, trong điều kiện tối ưu có thể đạt 24,5 g/m 2 .ngày và năng suất Lipid là 4 g/m 2 .ngày (Boussiba etal, 1986). Trong điều kiện nuôi tốt, sau 7 ngày có thể đạt mật độ 95 x 10 6 tb/ml. Nannochloropsis oculata là thức ăn thích hợp cho nuôi luân trùng Brachionus plicatilis. (Hình 2) 2.4.3 Tetraselmis chui (= Platymonas sp) Tảo Tetraselmis chui có tế bào hình dẹt, có 4 tiên mao, di động mạnh trong nước, sinh trưởng chậm hơn Nannochloropsis oculata. Môi trường tốt nhất cho sự phát triển của Tetraselmis chui: độ mặn 30‰, nhiệt độ 30 0 C (Vũ Dũng, 1998), Tetraselmis chui phát triển tốt trong môi trường dinh dưỡng Walne, Guillard và Ryther. Thành phần axít béo của tảo này được đặc trưng bởi tỷ lệ axit béo không no cao đặc biệt là C 18:3 (18.9 %), C 18:4 (7.5 %), C 20:5 (7.5 %), và C 22:6 (1.4 %) (Pohl và cộng sự, 1979). Tetraselmis chui là thức ăn thích hợp cho ấu trùng hai mảnh vỏ (Pe Pauw, 1983) và được sử dụng rộng rãi trong làm thức ăn cho ấu trùng tôm, bào ngư, Artemia và luân trùng. (Hình 3). 2.4.4 Isochrysis galbana Tảo Isochrysis galbana thuộc lớp Chrysophyceae. Có màu nâu vàng, kích thước từ 5 – 7 µm. Tế bào chứa 7,07% khối lượng tịnh là lipid, tỷ lệ axít béo không no chiếm 60% tổng lượng xít béo, Isochrysis galbana là một trong những loài vi tảo biển tích luỹ trong cơ thể lượng chất béo rất cao, đôi khi chiếm tới 40% trọng lượng khô. Isochrysis galbana là thức ăn tốt cho zooplankton (ấu trùng thân mềm hai mảnh vỏ, copepoda và luân trùng) (Toonen, 1995). (Hình 4) 2.5 Một Số Yếu Tố Môi Trường Ảnh Hưởng Tới Sinh Trưởng Của Tảo Nuôi 2.5.1 Nhiệt độ 7 Nhiệt độ ao hồ nuôi biến động theo ngày đêm (cao nhất vào lúc 14h và thấp nhất vào 5 – 6h), theo mùa và theo độ sâu, những ao hồ có diện tích càng nhỏ thì biên độ dao động nhiệt càng lớn, ở những ao hồ nhỏ ánh sáng mặt trời nhanh đốt nóng lớp nước bề mặt làm tỷ trọng nước ở tầng này nhẹ hơn tầng dưới, do đó mà khả năng xáo trộn giữa các tầng nước kém làm nước phân tầng rõ rệt. Nhiệt độ ảnh hưởng rất lớn đến thực vật thủy sinh đặc biệt là phytoplankton, khi nhiệt độ cao quá hoặc thấp quá có thể làm tăng hoặc giảm quá trình trao đổi chất gây rối loạn sinh lý ở sinh vật. Nhiệt độ mà đa số các loài tảo có khả năng chịu đựng là 16 – 35 0 C, nếu nhiệt độ thấp hơn 16 0 C thì tảo phát triển kém, nhưng nếu cao hơn 35 0 C thì tảo sẽ chết. Nhiệt độ tối ưu cho đa số các loài tảo là 20 – 24 0 C, tuy nhiên giá trị này biến đổi tuỳ loài. 2.5.2 Ánh sáng Vi tảo là loài quang tự dưỡng, chúng sử dụng năng lượng ánh sáng mặt trời, dưỡng chất và các khoáng vi lượng để tự tổng hợp chất hữu cơ cho cơ thể nên thời gian chiếu sáng và cường độ ánh sáng ảnh hưởng rất lớn đến sự phát triển của tảo nuôi. Tuy nhiên cường độ chiếu sáng và thời gian chiếu sáng phụ thuộc vào từng loài tảo, mặc dù chúng sống và phát triển là nhờ quá trình tổng hợp chất hữu cơ dưới điều kiện ánh sáng mặt trời nhưng thời gian chiếu sáng tối đa chưa hẳn là tốt nhất, ví dụ như tảo Skeletonema costatum thì thời gian chiếu sáng 12h/24h (theo chu kỳ ngày đêm) là tốt nhất (Lê Viễn Chí, 1996), cường độ chiếu sáng cũng phụ thuộc vào thể tích nuôi, thể tích nhỏ thì cường độ chiếu sáng có thể nhỏ nhưng nếu thể tích nuôi lớn thì cường độ chiếu sáng phải lớn kết hợp với s ục khí và đảo nước. 2.5.3 pH pH có ảnh hưởng rất lớn đến đời sống của thủy sinh vật, mỗi loài sinh vật chỉ tồn lại trong một khoảng pH nhất định, nếu tăng quá hoặc giảm quá sẽ gây rối loạn trao đổi chất của sinh vật. Đặc biệt là đối với thực vật thủy sinh chúng sử dụng CO 2 cho quá trình tổng hợp chất hữu cơ, làm dịch chuyển hệ cân bằng bicacbonat: 2HCO 3 - ⇔ CO 3 2- + CO 2 + H 2 O (1) CO 3 2- + H 2 O ⇔ HCO 3 - + OH - (2) Khi tảo quang hợp phương trình (1) và (2) tích cực chuyển sang phía phải để chống lại sự giảm CO 2 kết quả làm nước tích nhiều ion OH - làm pH tăng cao, khi tảo đạt mật độ cực đại pH có thể ≥ 9. pH trong bể nuôi còn có tác dụng kiểm soát H 2 S. Ở nhiệt độ 24 0 C: + Nếu pH = 5 thì 99,1% H 2 S ở dạng khí độc. + Nếu pH = 9 thì chỉ có 1% H 2 S ở dạng khí độc. 8 2.5.4 Độ mặn Đối với các thực vật nổi như vi tảo thì độ muối ảnh hưởng rất lớn đến sinh trưởng và phát triển, điều này thể hiện khi mưa lớn hoặc nắng lớn kéo dài có thể dẫn đến sự thay đổi thành phần và số lượng các loài tảo trong các thủy vực tự nhiên, ngoài ra nó còn ảnh hưởng tới sự phát triển của động vật phù du (zooplankton). 2.5.5 Sục khí Sục khí là khâu rất quan trọng không thể thiếu trong nuôi vi tảo nhất là những bể nuôi có độ sâu lớn. Sục khí có tác dụng đảo đều tảo (rất có ý nghĩa đối với những tảo có kích thước tế bào lớn, dễ lắng) giúp các tế bào tiếp xúc đều với ánh sáng, dinh dưỡng, giảm hiện tượng phân tầng nhiệt độ và còn có tác dụng lớn trong việc cung cấp CO 2 cho quang hợp của tảo. Sục khí phải đảm bảo 24h/24h. 2.5.6 Ảnh hưởng của mật độ giống ban đầu lên sự phát triển của tảo Trong các yếu tố ảnh hưởng tới sinh trưởng quần thể tảo, mật độ giống ban đầu cho chúng ta khả năng tác động tích cực nhất. Trong cùng một điều kiện môi trường, mật độ giống cao sẽ tạo khả năng sinh trưởng nhanh và đạt mật độ cực đại cao. Mật độ nuôi ban đầu mà thưa thì ánh sáng dễ phân bố đều hơn trong cùng một thể tích nuôi, nhưng nếu mật độ ban đầu mà thưa quá thì nó ảnh hưởng đến cạnh tranh phát triển của vi khuẩn. Ví dụ về tảo Sketonema cotatum mật độ ban đầu là 2 x 10 4 tb/ml, phải sau 54 – 60h tảo mới đạt mật độ cực đại, nhưng với mật độ ban đầu là 10 x 10 4 tb/ml thì chỉ sau 30 – 36h tảo đạt mật độ cực đại ( Lê Chí Viễn,1996). Tuy nhiên, lượng giống tảo sử dụng ở mức nào là do mục đích của người sử dụng. Trong nhân sinh khối tảo để làm thức ăn cho động vật nuôi, người ta quan tâm nhất là khối lượng sinh khối tảo đạt được trong thời gian nhất định nên mật độ tảo giống ban đầu thường lớn. 2.6 Động Lực Học Sinh Trưởng Đồ thị1 tăng trưởng chung của một số loài tảo Sự tăng trưởng của các vi tảo trong điều kiện vô trùng được đặc trưng bởi 4 pha + Pha chậm hoặc pha cảm ứng Pha này, mật độ tế bào tăng ít hoặc có thề không tăng, giai đoạn này tương đối dài khi chuyền từ môi trường thạch sang môi trường lỏng. Việc chậm phát triển là do sự thích nghi 9 sinh lý của sự chuyển hoá tế bào để phát triển, nhưng tăng các mức enzym và các chất chuyển hoá liên quan đến sự phân chia tế bào và sự chuyển hoá cácbon. + Pha sinh trưởng theo hàm số mũ Trong pha này mật độ tảo tăng như hàm số mũ của thời gian t theo hàm lôgarit: C t = C o .e mt Với C t và C o là các nồng độ tế bào tại thời điểm t và 0 tương ứng mà m= tốc độ sinh trưởng đặc thù phụ thuộc chủ yếu vào loài tảo, cường độ ánh sáng và nhiệt độ. + Pha dừng Ở pha này yếu tố hạn chế và tốc độ sinh trưởng được cân bằng, số tế bào sinh ra tương đương với số tế bào chết đi, làm mật độ tảo không tăng hoặc tăng rất ít. + Pha tàn lụi Trong pha cuối cùng này, chất lượng nước xấu đi và các chất dinh dưỡng suy kiệt tới mức không thể duy trì được sự sinh trưởng. Mật độ tế bào giảm nhanh và quá trình nuôi cũng kết thúc tại đây. 2.7 Một Số Phương Pháp Nuôi Tảo 2.7.1 Đặc điểm cơ bản của một số phương pháp nuôi tảo Bảng 3 Đặc điểm của các phương pháp nuôi tảo Phương pháp Đặc điểm Ưu điểm Nhược điểm Nuôi trong phòng Nuôi ngoài trời Tảo được nuôi trong phòng thí nghiệm hay nhà kín Tảo được nuôi trực tiếp ngoài trời, sử dụng nước biển, ánh sáng tự nhiên. Các yếu tố môi trường như nhiệt độ, độ mặn, ánh sáng được khống chế thích hợp. Hạn chế được tác động bên ngoài, hạn chế nhiễm tạp, nhiễm khuẩn. Quy trình kỹ thuật được đảm bảo. Sản xuất chủ động Rẻ, đơn giản, có thể nuôi với quy mô lớn. Đầu tư kỹ thuật cao và đắt tiền Khó kiểm soát môi trường mà hoàn toàn phụ thuộc vào thời tiết, khí hậu. Khi điều kiện môi trường 10 [...]... % sau 2 ngày nuôi và đạt 188.9 % ở tảo C vulgaris + Tảo T chui thu hoạch ở thể tích 2 lít một phần dùng làm giống nhân mới ở bể ximăng con chủ yếu là thu hoạch trực tiếp cho luân trùng ăn + Tảo C vulgaris kết thúc nuôi sinh khối ở thể tích 2 m3, sau 2 ngày nuôi được thu trực tiếp vào các bể nuôi luân trùng 4 2.2.4 Nhân sinh khối tảo ở bể xi măng Bảng 16 Mật độ tảo nuôi ở bể ximăng Loài tảo Số mẫu Mật... kết quả theo dõi nhận thấy ở tất cả các thể tích nuôi ngoài trời tảo T chui phát triển nhanh nhất (khác với trong phòng thí nghiệm) 4.2.3 Một số chỉ tiêu theo dõi Bố trí thí nghiệm để theo dõi tốc độ phát triển của các loài tảo nuôi và theo dõi biến động một số yếu tố môi trường 4.2.3. 1Theo dõi sự tăng trưởng của một số loài tảo (ở thể tích 2 lit) a, Tăng trưởng Nanochloropsis oculata 27 + Tảo N oculata... tích nuôi ngoài trời giá trị lớn hơn các bình nuôi 2 lít trong nhà và cũng có biên độ dao động lớn hơn 33 4.2.3. 5Theo dõi sự biến động nhiệt độ và độ mặn của ở các thể tích nuôi ngoài trời a, Theo dõi sự biến động nhiệt độ của ở các thể tích nuôi ngoài trời 34 Theo Guillard R.R.I (1997) khoảng nhiệt độ thích hợp cho sự phát triển các loài tảo là 20 – 24 0C và khoảng nhiệt độ mà các loài tảo có khả năng... + Các dụng cụ nuôi tảo - Các thùng có thể tích 100 lít, các bể Composite có thể tích từ 0.5 – 2 m 3 và các bể xi măng có thể tích 60 m3 - Các dụng cụ sau khi kết thúc 1 đợt nuôi phải tiến hành khử trùng bằng xà bông, sau đó rửa kỹ lại bằng nước ngọt (đối với các loài tảo kích thước nhỏ như Nanochloropsis oculata và Chlorella sp thì phải khử trùng bể bằng Chlorine 3 – 5 ppm) + Nước nuôi tảo là nước biển. .. 4.2.3. 4Theo dõi sự biến động pH và NH3_N của tảo Tetraselmis chui ở các thể tích nuôi ngoài trời Bảng 18 Biến thiên NH3-N ở các loài tảo nuôi (ngoài trời) NH3 Vnuôi (m3) pH _N Ngày cấy Thu hoạch Ngày cấy Thu hoạch 0.5 9.050 9.350 0.136 0.141 1 8.400 8.700 0.019 0.134 2 8.950 9.250 0.032 0.074 32 + PH ở các bể nuôi tảo ngoài trời cũng biến thiên tỷ lệ thuân với mật độ tảo nuôi + PH của tảo T chui ở các... hợp dùng để bón cho tảo Liều lượng dùng ở phòng thí nghiệm là 1 ml/1 lít tảo nuôi, nuôi ở ngoài trời dùng 1 – 2 ml/10 lít tảo nuôi 3.2.2.2 Thành phần môi trường phân vô cơ Bảng 5 Thành phần các chất trong môi trường dinh dưỡng phân vô cơ Khối lượng (g/m3) 100 10 15 Thành phần SA (Sunfat Amonium) Urê Lân 3.2.3 Nước nuôi Nước dùng trong nuôi tảo là nước biển xử lý theo quy trình Nước biển Chlorine (30... độ theo đợt, theo từng thể tích b, Theo dõi sự biến động độ mặn của ở các thể tích nuôi ngoài trời PHẦN V KẾT LUẬN VÀ ĐỀ XUẤT 35 5.1 Kết Luận + Điều kiện quan trong nhất trong lưu giữ giống là kỹ thuật vô trùng + Tảo giốngcó thể lưu giữ trong tủ giữ tảo 6 – 8 tuần nhưng để chất lượng giống tốt và tảo phát triển nhanh khi nhân giống thì nên nuôi san ở tuần thứ 3 – 4 + Trong các loài tảo theo dõi thì tảo. .. lắc tảo bằng máy lắc + Sau 2 – 3 ngày sẽ thấy tảo phát triển 3.3.2 Nhân sinh khối một số loài tảo 3.3.2.1 Nhân sinh khối trong phòng thí nghiệm a/ Chuẩn bị + Dụng cụ - Các bình nuôi tảo trong phòng thí nghiệm có thể tích từ 0.1 – 10 lít, túi nilong - Khử trùng bình nuôi: Trong nuôi tảo, đặc biệt là nuôi cấy giống trong phòng thí nghiệm thì tất cả các khâu đều phải vô trùng (tránh nhiễm tạp) Các bình nuôi. .. được làm giống nuôi cấy vào bể có thể tích lớn hơn và cứ thế Ở bể sản xuất, tảo ở mật độ cao sẽ được thu hoạch Nuôi chuyền 2.7.2 Ít nhiễm tạp (tảo tạp, vi Quy mô nhỏ Đắt khuẩn, protozoa hay tiền Thao tác nuôi rotifer…) Chủ động cấy cẩn thận trong sản xuất Dễ nhiễm tạp, ảnh hưởng đến tảo nuôi Tốn nhiều công, ít kinh tế Chất lượng tảo ở các bể lớn có thể không đảm bảo Kỹ thuật nuôi tảo theo phương pháp nuôi. .. với các lô thí nghiệm thì đo vào các pha: pha chậm, pha tăng trưởng và pha dừng Ở ngoài các bể nuôi sinh khối, đo Amonia lúc mới cấy tảo và lúc thu hoạch 3.3.4.3 Nhiệt độ - Đo nhiệt độ 2 lần/ngày vào 6h và 14h mỗi ngày - Sử dụng nhiệt kế thủy tinh để đo 3.3.3.4 Độ mặn Sử dụng khúc xạ kế để đo độ mặn hàng ngày 3.3.5 Các chỉ tiêu theo dõi + Theo dõi sự phát triển của một số loài tảo nuôi 20 + Theo dõi . kiến thức thực tế, kết hợp lý thuyết với thực tiễn sản xuất, tôi được trường phân công và trung tâm chấp nhận cho làm chuyên đề : Theo dõi quy trình nuôi tảo làm thức ăn cho ấu trùng cá biển ăn cho các giai đoạn ấu trùng của một số loài tôm, cá. Ngoài ra, trong các bể ương ấu trùng cá biển, tảo còn có vai trò ổn định chất lượng nước và kiểm soát vi khuẩn. Bên cạnh vai trò làm thức. loài cá biển và tôm He … hoặc có thể là thức ăn gián tiếp cho ấu trùng các loài trên thông qua zooplankton (luân trùng, giáp xác chân chèo, artemia). Vi tảo còn được nuôi trực tiếp trong các