TCNCYH 21 (1) - 2003 ảnh hởng của Hải m và Hải m-nhân sâm lên cấu trúc hình thái tinh hoàn chuột cống trắng Đậu Xuân Cảnh 1 , Trịnh Bình 2 , Phạm Thị Minh Đức 2 1 Bệnh viện Y học Dân tộc Quảng Nam, 2 Đại học Y Hà Nội Cho chuột cống trắng đực, uống Hải mã và Hải mã-Nhân sâm với các liều khác nhau. Sau 2 tuần uống thuốc, quan sát cấu trúc vi thể tinh hoàn chuột, các tác giả nhận thấy: - Hải mã và Hải mã+Nhân sâm không làm thay đổi cấu trúc bình thờng của biểu mô tinh và tuyến kẻ tinh hoàn. - Đờng kính trung bình của các ống sinh tinh của tất cả các nhóm nghiên cứu không có sự khác biệt có ý nghĩa và đều lớn hơn so với ở chuột nhóm chứng không uống Hải mã và Hải mã+Nhân sâm. - Tỷ lệ các ống sinh tinh có biểu hiện hoàn thành quá trình sinh tinh ở tinh hoàn các nhóm nghiên cứu đều tăng có ý nghĩa so với ở chuột nhóm chứng không uống Hải mã và Hải mã+Nhân sâm. I. Đặt vấn đề Hiện nay, tình trạng suy giảm chức năng sinh dục ở nam giới khá cao. Theo Trần Quán Anh, tình trạng vô sinh của những cặp vợ chồng ở cộng đồng là 15% trong đó nguyên nhân do nam giới chiếm xấp xỉ 50% [1]. Một điều tra của Phạm Văn Trịnh cho thấy tình trạng rối loạn cơng dơng chiếm từ 15,7% ở tuổi 41-50; 28-57% ở tuổi trên 60 [6]. Cùng với việc áp dụng các kỹ thuật hỗ trợ sinh sản, việc tìm ra những cây, con thuốc có tác dụng cải thiện chức năng sinh dục nam là một việc làm cần thiết. Hàng ngàn năm nay, trong Y học cổ truyền, Nhân sâm (NS), Hải mã (HM) là những dợc liệu quí, có giá trị lớn trong chữa bệnh và tăng cờng sức khoẻ [2], [3]. Trong các thử nghiệm lâm sàng, nhiều bằng chứng khoa học chứng minh rằng Nhân sâm có giá trị trong điều trị hội chứng stress, tăng cờng năng lợng, phục hồi sức khoẻ, phục hồi trạng thái kiệt sức, tăng cờng khả năng đáp ứng miễn dịch của cơ thể, cải thiện trí nhớ, ngăn cản trạng thái mệt mỏi, phòng bệnh, làm mạnh mẽ cơ thể, cải thiện khả năng hoạt động tình dục [2]. Hải mã thờng đợc dùng làm thuốc bổ thận, tráng dơng giúp cải thiện tình trạng bất lực hoặc chậm có con [3]. Với mục đích từng bớc nghiên cứu ảnh hởng của Hải Mã và Nhân sâm đến hệ sinh dục nam, công trình nghiên cứu này đợc tiến hành nhằm tìm hiểu những biến đổi của cấu trúc hình thái tinh hoàn chuột cống trắng sau khi uống các chế phẩm của hai dợc liệu này. II. chất liệu, đối tợng và phơng pháp nghiên cứu 1. Chất liệu nghiên cứu + Thân rễ sâm Việt Nam (Panax Vietnamensis) 5 năm tuổi trở lên. + Hải mã (Hippocampus) họ Hải long Syngnathidae loại Hải mã gai. Cả 2 vị thuốc đều đợc bào chế và đóng thành viên nang tại Viện Dợc liệu Trung ơng. 2. Đối tợng nghiên cứu + 85 chuột cống trắng đực, chủng Rattus, 2 tháng tuổi, có trọng lợng trung bình là: 147,8 Đề tài đợc thực hiện tại bộ môn Mô phôi, Sinh lý học, Đại học Y Hà Nội. 7 TCNCYH 21 (1) - 2003 27,8g. + Tất cả chuột đều đợc nuôi trong phòng thí nghiệm với cùng điều kiện nhiệt độ, độ ẩm, thời gian sáng/ tối là 12/12 h. Thức ăn và nớc uống đợc cung cấp đầy đủ. 3. Liều dùng và phân nhóm thí nghiệm + Liều dùng: liều I =120mg/100g trọng lợng chuột/ngày. liều II = 240mg/100g trọng lợng chuột/ngày. Loại kết hợp HM+NS đợc đóng viên nang liều 1/1. + Cách dùng: bằng đờng uống. Hàng ngày cho chuột uống thuốc vào lúc 9 h sáng, sau 15 phút cho chuột ăn và uống nớc nh bình thờng. Cho uống thuốc liên tục trong 2 tuần. Hết 2 tuần, giết chuột bằng cách cắt đầu: mổ, tách lấy tinh hoàn. Chuột đợc chia làm 5 nhóm: 1. Nhóm chứng (17 con) uống nớc cất; 2. Nhóm uống Hải mã liều I (17 con); 3. Nhóm uống Hải mã liều II (17 con); 4. Nhóm uống Hải mã + Nhân sâm liều I (17 con); 5. Nhóm uống Hải mã + Nhân sâm liều II (17 con). 4. Kỹ thuật tách lấy tinh hoàn. Sau 2 tuần uống thuốc, giết chuột bằng cách cắt đầu, mở bìu chuột để bộc lộ tinh hoàn, bóc tách nhẹ nhàng, cắt lấy toàn bộ tinh hoàn chuột, cố định trong dung dịch Bouin. 5. Hoàn thành tiêu bản mô học Cắt tinh hoàn thành miếng theo mặt cắt ngang các ống sinh tinh. Cố định tiếp bằng Bouin. Đúc khối paraffine. Cắt lát mỏng, mỗi lát có chiều dày 5 đến 7àm. Mỗi tinh hoàn lấy 5 lát, mỗi lát cách nhau khoảng 30 àm. Nhuộm 2 mầu Hematoxylin - Eosin. 6. Nhận định kết quả và chỉ tiêu nghiên cứu Quan sát dới kính hiển vi quang học với độ phóng đại 20 đến 200 lần. Nhận xét định tính về biểu mô tinh, tuyến kẽ và định lợng theo 2 chỉ số: (a) đờng kính trung bình của ống sinh tinh của mỗi chuột và mỗi nhóm chuột; (b) Tỉ lệ các ống sinh tinh hoàn thành quá trình sinh tinh bào và tỷ lệ các ống sinh tinh hoàn thành quá trình tạo tinh trùng. Định lợng bằng trác vi thị kính và phần mềm định lợng KS.400 của hãng Carl Zeiss Cộng Hoà Liên bang Đức. Kỹ thuật mô học và nhận định kết quả đợc thực hiện tại bộ môn Mô-Phôi học Trờng Đại học Y Hà Nội (tháng 8 năm 2002). III. kết quả 1. Nhận xét cấu trúc vi thể tinh hoàn chuột ở các nhóm thí nghiệm 1.1. Nhóm chứng (không uống thuốc) a/ ống sinh tinh và mô kẽ Trên tiêu bản mặt cắt ngang qua tinh hoàn - Các ống sinh tinh có hình bầu dục, có đờng kính dài khác nhau, nhng đờng kính ngắn tơng đối đồng đều. - Mô kẽ chứa tế bào kẽ nằm ở vùng ranh giới giữa các ống sinh tinh; mô liên kết ít phát triển. - Biểu mô tinh của mặt cắt các ống sinh tinh có mật độ tế bào và loại tế bào không đồng đều nh nhau ( biểu hiện ở các giai đoạn của chu kỳ tạo tinh). b/ Các loại tế bào biểu mô tinh - Tinh nguyên bào: nằm sát màng ống sinh tinh thành một hàng. Nhân bắt mầu base đậm, kích thớc nhỏ. Có 2 loại: sẫm mầu và nhạt mầu. - Tinh bào: kích thớc nhân lớn, khối chất nhiễm sắc bắt mầu base đậm. Tinh bào xếp thành 2 đến 4 hàng, tuỳ từng biểu mô tinh. - Tiền tinh trùng: nhân tròn hoặc bầu dục, sáng màu, xếp thành nhiều hàng về phía lòng ống sinh tinh, vùi trong bào tơng tế bào Sertoli. Có ống sinh tinh không thấy tiền tinh trùng. - Tinh trùng: Đầu bắt mầu base đậm, hình thoi dài (hoặc chấm nếu ở mặt cắt ngang), đuôi tinh trùng tập trung thành đám ở phía lòng ống sinh tinh. Có biểu mô tinh không thấy đầu tinh trùng. 8 TCNCYH 21 (1) - 2003 - Tế bào Sertoli: Nhân tròn, sáng mầu, hạt nhân rõ, bào tơng khó phân biệt với bào tơng của các tế bào dòng tinh. c/ Các dạng biểu mô tinh trong các mặt cắt qua ống sinh tinh 1/ Loại biểu mô tinh có đủ 4 loại tế bào: Tinh nguyên bào, tinh bào, tiền tinh trùng, và tinh trùng. 2/ Loại biểu mô tinh có 3 loại tế bào: Tinh nguyên bào, tinh bào, tiền tinh trùng (nhng không có tinh trùng). 3/ Loại biểu mô tinh có 3 loại tế bào: Tinh nguyên bào, tinh bào, tinh trùng (nhng không có tiền tinh trùng). 1.2. Nhóm uống Hải mã I * Hình ảnh vi thể chung của ống sinh tinh, mô kẽ, tuyến kẽ không thấy thay đổi so với nhóm chứng. * Biểu mô tinh và lòng ống sinh tinh: hình ảnh vi thể và vị trí các tế bào dòng tinh không thay đổi. * Tế bào Sertoli: không có hình ảnh bất thờng. 1.3. Nhóm uống Hải mã II * Hình ảnh cấu trúc ở các mặt cắt qua tinh hoàn không thấy thay đổi so với nhóm chứng. * Biểu mô tinh và lòng ống sinh tinh: hình thái vi thể và vị trí các tế bào dòng tinh không thay đổi. * Tế bào Sertoli : bào tơng và nhân không thấy dấu hiệu bất thờng. 1.4. Nhóm uống HM+NS I * Hình ảnh cấu trúc ở các mặt cắt qua tinh hoàn không thấy thay đổi so với ở tinh hoàn nhóm chứng. * Biểu mô tinh và ống sinh tinh: hình thái vi thể và vị trí các tế bào dòng tinh không thay đổi. * Tế bào Sertoli : bào tơng và nhân không thấy dấu hiệu bất thờng. 1.5. Nhóm uống HM+NS II * Hình ảnh các cấu trúc vi thể trên mặt cắt qua tinh hoàn không khác nhóm chứng. 2 Nhận xét chung về hình ảnh vi thể tinh hoàn chuột của các nhóm thí nghiệm so với nhóm chứng 1 ảnh 1. T chứng. 1. ốn g (H.E. x 1 2 ảnh 1. Tinh hoàn chuột cống trắng nhóm chứng 1. ống sinh tinh; 2. Tuyến kẽ và mô kẽ. (H.E. x 20)ảnh 1. 3 1 2 ảnh 2. Tuyến kẽ tinh hoàn chuột cống trắng nhóm chứng: 1. Mao mạch máu; 2. Tế bào leydig; 3. Tế bào mô liên kết. (H.E x 200). 3 2 1 ảnh 3. Biểu mô tinh của ống sinh tinh chuột nhóm HM II, có 3 loại tế bào dòng tinh: 1. Tinh nguyên bào, 2. Tinh bào; 3. Tinh trùng. (H.E x 200). 9 TCNCYH 21 (1) - 2003 ả nh 4. ố ng sinh tinh chuột ở nhóm HM+NS II: 1- Biểu mô tinh có 3 loại tế bào dòng tinh (không có tinh trùng); 2- Biểu mô tinh có đủ 4 loại tế bào dòng tinh; 3- Biểu mô tinh có 3 loại tế bào dòng tinh (không có tiền tinh trùng) (H.E x 50). + Không thấy biến đổi cấu trúc chung của ống sinh tinh và mô kẽ (trong đó có tế bào kẽ) ở các nhóm nghiên cứu ( Hình 3,4). + Không thấy sự thay đổi cấu trúc vi thể của các tế bào dòng tinh, tế bào Sertoli và tuyến kẽ (hình 3,4). + Không thấy sự đảo lộn vị trí thờng thấy của tế bào dòng tinh trong biểu mô tinh. Không thấy tình trạng bong tế bào mầm của dòng tinh vào lòng ống sinh tinh (hình 3). + ở tất cả các nhóm nghiên cứu, quá trình tạo tinh trùng ở các giai đoạn của tế bào dòng tinh diễn ra tơng tự nh ở nhóm chứng (hình 1,2,3,4). 2. Đờng kính trung bình của ống sinh tinh Bảng 1. Đờng kính trung bình của ống sinh tinh ở các nhóm nghiên cứu Nhóm n Đờng kính (X SD) (àm) Chứng (1) 17 208,704 16,516 HM I (2) 17 219,495 15,688 HM II (3) 17 224,341 22,420 HM+NS I (4) 17 218,947 22,402 HM+NS II(5) 17 212,645 12,602 p 1-2 <0,001;p 1-3 <0,001; p 1-4 <0,001; p 1-5 <0,01; 3 p 2-3 <0,001; p 2-4 <0,001; p 2-5 <0,001; p 3-4 >0,05; p 3-5 <0,001; p 4-5 <0,01. 2 1 Bảng 1. cho thấy: - Đờng kính trung bình ống sinh tinh của cả 4 nhóm chuột đợc uống thuốc đều lớn hơn hẳn nhóm chứng (p<0,001), trong đó nhóm HM I có đờng kính lớn nhất. - Đờng kính trung bình ống sinh tinh của nhóm HM I và HM+NS I đều lớn hơn hẳn 2 nhóm HM II và HM+NS II (p<0,01 - 0,001). 3. Tỉ lệ các ống sinh tinh phản ánh 2 giai đoạn tạo tinh bào và sinh tinh trùng Bảng 2. Tỷ lệ các ống sinh tinh phản ánh 2 giai đoạn: tạo tinh bào và sinh tinh trùng của các nhóm nghiên cứu . Lòng ống sinh tinh Nhóm n Không có tinh trùng (%) Có tinh trùng (%) Chứng (1) 17 62,05 37,95 HM I (2) 17 40,28 59,72 HM II (3) 17 40,72 59,28 HM+NS I (4) 17 38,88 61,12 HM+NS II(5) 17 38,84 61,16 p p 1-2 <0,001; p 1-3 <0,001; p 1-4 <0,001; p 1-5 <0,001; p 2-3 >0,05; p 4-5 >0,05; p 2-4 >0,05; p 3-5 >0,05; p 1-2 <0,001; p 1-3 <0,001; p 1-4 <0,001; p 1-5 <0,001; p 2-3 >0,05; p 4-5 >0,05; p 2-4 >0,05; p 3-5 >0,05; Bảng 2. cho thấy: - Tỷ lệ phần trăm lòng ống sinh tinh có tinh trùng của 4 nhóm dùng thuốc đều cao hơn hẳn nhóm chứng (p<0,001). - Không có sự khác biệt về tỷ lệ lòng ống sinh tinh có tinh trùng giữa 4 nhóm nghiên cứu. 10 TCNCYH 21 (1) - 2003 IV. bàn luận 1. Về hình ảnh cấu trúc vi thể tinh hoàn Chức năng của tinh hoàn là sản sinh tinh trùng và bài tiết hormon. Sản sinh tinh trùng do các tế bào của biểu mô tinh đảm nhiệm. Bài tiết hormon testosteron do tế bào Leydig còn tế bào Sertoli thì bài tiết hormon inhibin, có tác dụng điều hoà ngợc âm tính đối với FSH do đó điều hoà sản sinh tinh trùng. Ngoài ra tế bào Sertoli còn làm chức năng nuôi dỡng, bảo vệ quá trình sản sinh tinh trùng [4], [5]. Trớc khi xác định hình ảnh vi thể của các nhóm nghiên cứu chúng tôi tiến hành xác định hình ảnh vi thể của chuột ở nhóm chứng để so sánh với các nhóm dùng thuốc và hình ảnh vi thể tinh hoàn chuột có các đặc điểm nh: - Đặc điểm cấu trúc mô và tế bào dòng tinh của chuột có những nét riêng không giống ngời và một số gia súc khác, nhất là biểu hiện hình thái của chu kỳ sinh tinh qua các giai đoạn của ống sinh tinh trong tinh hoàn. Mô kẽ trong đó có tuyến kẽ cũng đơn giản và phân tán so với ngời và các động vật khác [8]. - Tinh hoàn rất nhạy cảm với các yếu tố kích thích làm thay đổi hình thái nh: nhiệt, cơ học, hoá chất , sinh học, thiếu máu cục bộ.[4], [7], [8], [9]. Nên trong cùng một điều kiện thí nghiệm, việc xác định hình thái của nhóm chứng là bắt buộc, để loại trừ những dấu hiệu tổn thơng không phải do tác động của thuốc. Chúng tôi tiến hành khảo sát hình ảnh vi thể bằng hai phơng pháp là định tính và định lợng. Kết quả hình ảnh vi thể của các nhóm uống thuốc (đã trình bày chi tiết tại phần kết quả nghiên cứu) gồm cấu trúc chung của ống sinh tinh và mô kẽ (trong đó có tuyến kẽ), các cấu trúc vi thể của các tế bào dòng tinh, tế bào Sertoli và tuyến kẽ cho thấy không có sự biến đổi. Kết quả này chỉ cho thấy HM và HM+NS không làm ảnh hởng tới cấu trúc bình thờng của tinh hoàn ở liều 120mg và 240mg/100g trọng lợng cơ thể chuột/ ngày. Ranga A, Kalla NR G, Kanwar U [10], Salvati G, Genovesi G, Marcellini L [11], khi nghiên cứu về ảnh hởng của NS lên tinh hoàn chuột cũng có nhận xét NS không làm ảnh hởng đến các tế bào dòng tinh, tế bào mầm, và các giai đoạn của quá trình sinh tinh. Vị trí thờng thấy của các tế bào dòng tinh trong biểu mô tinh không thấy đảo lộn, các tế bào mầm không bị bong vào lòng ống sinh tinh, quá trình tạo tinh trùng biểu hiện ở các giai đoạn của chu kỳ tạo tinh diễn ra tơng tự nh ở nhóm chuột chứng. Những kết quả này chỉ ra rằng HM và HM+NS không độc đối với tinh hoàn chuột [9], [11]. Trong các nghiên cứu của mình Kang JK [7], Kim W, Hwang S, Lee H [9] cũng chỉ ra rằng NS có tác dụng làm giảm độc của tinh hoàn khi bị nhiễm độc và giúp bảo vệ tinh hoàn chống lại 2,3,7,8-tetrachlorodibenzo-p-dioxin. Những hình ảnh vi thể có thể định lợng đợc trong công trình này là đo đờng kính ống sinh tinh và đếm các ống sinh tinh có tinh trùng và các ống sinh tinh không có tinh trùng [4], [8]. 2. Về đờng kính ống sinh tinh ống sinh tinh là những ống hình quai, có thể chia nhánh. Đầu gần giáp với thể Highmore tinh hoàn mở vào ống ngắn; đầu xa phía ngoại vi tinh hoàn là đỉnh của quai [4]. Dới kính hiển vi quang học, trên mặt cắt ngang trục, ống sinh tinh có hình tròn hoặc hình trứng, lỗ trong thành ống không có ranh giới rõ rệt, bờ ngoài ống ranh giới rõ rệt. Từ ngoài vào trong, thành ống cấu tạo bởi vỏ liên kết xơ- chun - màng đáy- biểu mô. Biểu mô này đợc gọi là biểu mô tinh, đợc cấu tạo bởi 2 loại tế bào: tế bào Sertoli và tế bào dòng tinh [4]. Biểu mô tinh có thể teo nhỏ lại trong những trờng hợp bệnh lý, hoặc nở to có thể do quá trình sinh tinh đợc kích thích. ống sinh tinh chiếm thể tích chủ yếu của tinh hoàn [4]. Kỹ thuật cắt tinh hoàn làm tiêu bản, là kỹ thuật cắt ngẫu nhiên, nên trên lát cắt mô học qua tinh hoàn, các ống sinh tinh có thể có 11 TCNCYH 21 (1) - 2003 những mặt cắt tròn hoặc bầu dục dài. Tuy nhiên vì ống sinh tinh tơng đối tròn nên ở mặt cắt nào qua các ống sinh tinh cũng có đờng kính ngắn tơng đơng nh nhau. Vì lý do đó, tiến hành đo các đờng kính nhỏ trung bình của các ống sinh tinh trong một tiêu bản với mục đích xem ống sinh tinh có nở ra; cũng có nghĩa là biểu mô tinh dày lên do quá trình sinh tinh đợc kích thích tăng lên [4], [8] hay không? Kết quả ở bảng 1. cho thấy đờng kính ống sinh tinh của tất cả các nhóm nghiên cứu đều lớn hơn nhóm chứng (p<0.001). Điều này phản ánh tác dụng kích thích của HM và HM+NS lên biểu mô tinh ở tinh hoàn chuột cống trắng. Nh vậy HM và HM+NS có tác dụng kích thích lên biểu mô tinh, song tác dụng vào giai đoạn nào của quá trình sinh tinh. Để trả lời câu hỏi này, cần khảo sát hình ảnh các dạng biểu mô tinh ở ống sinh tinh. 3. Tỷ lệ các ống sinh tinh phản ánh giai đoạn tạo tinh bào và sinh tinh trùng Quá trình sinh tinh trùng ở chuột bao gồm 2 giai đoạn: giai đoạn 1 là giai đoạn sinh tinh bào (Spermatocytonesis) và giai đoạn 2 là giai đoạn tạo tinh trùng (Spermiogenesis). Trên hình ảnh vi thể, có thể phân biệt 3 dạng biểu mô tinh điển hình trong chu kỳ tạo tinh và phản ánh 2 giai đoạn của chu kỳ sinh tinh trùng [4], [8]. Kết quả tại bảng 1 và 2 cho thấy ở tất cả các nhóm nghiên cứu, tỷ lệ phần trăm các ống sinh tinh có tinh trùng cao hơn nhiều so với nhóm chứng (p<0.001) và tỷ lệ phần trăm các ống sinh tinh không có tinh trùng ít hơn nhóm chứng (p<0.001). Điều này chỉ ra rằng HM và HM+NS đã tác động lên biểu mô tinh, cụ thể là làm tăng tỷ lệ các đoạn biểu mô tinh đang ở giai đoạn tạo tinh trùng. 4. Về tế bào Sertoli và tuyến kẽ tinh hoàn Dới kính hiển vi quang học, ranh giới giữa các tế bào Sertoli với nhau hoặc với các tế bào dòng tinh không phân biệt rõ. Nhân tế bào Sertoli nằm gần màng đáy, lớn, sáng mầu vì chứa ít chất nhiễm sắc và một hạt nhân lớn, rất rõ rệt [4]. Tế bào Sertoli đảm nhiệm nhiều chức năng nh tham gia vào sự cấu tạo hàng rào máu- tinh hoàn; tổng hợp protein và bài xuất chất tiết nh hormon inhibin; bảo vệ các tế bào dòng tinh; vận chuyển và phóng thích tế bào dòng tinh [4]. Hàng rào máu - tinh hoàn có cấu tạo đặc biệt và tế bào Sertoli đóng góp một phần quan trọng vào sự tạo ra hàng rào ấy. Hàng rào máu - tinh hoàn gồm các thành phần: Thành các mạch máu- Mô kẽ- Vỏ xơ bọc ngoài ống sinh tinh- Màng đáy lót ngoài biểu mô tinh- Những phức hợp liên kết gắn mặt bên các tế bào Sertoli nằm cạnh nhau. Một chất có mặt trong máu, muốn tác động vào các tế bào dòng tinh phải vợt qua các thành phần cấu tạo của hàng rào máu-tinh hoàn, do vậy tinh hoàn mới bảo vệ đợc quá trình sinh tinh cũng nh các chức năng khác [4]. Mô kẽ của tinh hoàn là một mô liên kết chen vào giữa các ống sinh tinh. Cấu trúc mô kẽ của chuột là một mô liên kết tha, chứa những tế bào trung mô kém biệt hoá, tế bào sợi, đại thực bào, mạch máu và những tế bào Leydig. Chức năng của tế bào kẽ tinh hoàn là tổng hợp và bài tiết hormon sinh dục nam testosteron [4], [5], [8]. Hình ảnh tế bào Sertoli và tuyến kẽ bình thờng trong các nhóm nghiên cứu cho thấy HM và HM+NS ở liều lợng 120 mg /100g trọng lợng chuột/ngày, và 240mg/100g trọng lợng chuột/ngày, không làm tổn thơng đến tế bào Sertoli và tuyến kẽ. Nhận xét này cũng tơng tự kết quả nghiên cứu của Ranga A và Salvati G [10], [11]. Những kết quả nghiên cứu hình thái bớc đầu rất lý thú này sẽ đặt tiền đề cho những nghiên cứu tiếp theo toàn diện hơn, sâu hơn nhằm đa ra những kết luận đầy đủ hơn, chính xác hơn về tác dụng của hai vị thuốc này đối với chức năng sinh sản nam. V. Kết luận Từ những kết quả nghiên cứu trên, chúng tôi có một số kết luận sau: 1- Hải mã và Hải mã+Nhân sâm với các liều đã dùng trong thí nghiệm không làm thay đổi 12 TCNCYH 21 (1) - 2003 cấu trúc bình thờng của biểu mô tinh và tuyến kẽ tinh hoàn. 2- Đờng kính trung bình của các ống sinh tinh không có sự khác biệt giữa các nhóm thí nghiệm và đều lớn hơn so với ở chuột nhóm chứng không uống thuốc. 3- Tỷ lệ các ống sinh tinh có biểu hiện hoàn thành quá trình sinh tinh ở tinh hoàn các nhóm nghiên cứu đều tăng có ý nghĩa so với ở chuột nhóm chứng không uống Hải mã và Hải mã + Nhân sâm. Tài liệu tham khảo 1. Trần Quán Anh (2002), "Bớc đầu nghiên cứu nguyên nhân và kết quả điều trị vô sinh nam", Báo cáo tổng kết đề tài nghiên cứu KH- CN cấp bộ, Bộ Y tế và Uỷ ban quốc gia dân số và kế hoạch hoá gia đình, Trờng Đại học Y Hà Nội, 2. Bộ Y Tế, Trung tâm Sâm Việt Nam (1993), "Sâm Việt Nam", Kết quả nghiên cứu từ 1978- 1993, Tp.Hồ Chí Minh. 3. Võ Văn Chi (1998), "Cá ngựa", Từ điển Động vật và khoáng vật làm thuốc ở Việt Nam, Nhà xuất bản Y học, Hà Nội, tr. 83- 86. 4. Phạm Phan Địch, Trịnh Bình, Đỗ Kính (1998), "Hệ sinh dục nam", Mô học, Nhà xuất bản Y học, Hà Nội, tr. 368-397. 5. Phạm Thị Minh Đức (2001), "Sinh lý sinh sản nam", Sinh lý học, 2, Nhà xuất bản Y học, Hà Nội, tr.119-134. 6. Phạm Văn Trịnh (1998), "Điều tra dịch tễ học về rối loạn cơng dơng trên 764 nam giới bình thờng", Kỷ yếu công trình Hội tiết niệu Hà Nội, tr.11-19. 7. Kang JK, Lee YJ, No KO(2002), "Ginseng intestinal metabolite-I(GIM-I) reduces doxorubicin toxicity in the mouse testis", Reprod Toxicol, 16(3), pp.291-8. 8. Kay Elder, Brian Dale (2000), "Spermatogenesis in mammals, In vitro fertilization", Cambrige University Press, 2, 22- 27. 9. Kim W, Hwang S, Lee H(1999), "Panax ginseng protects the testis against 2,3,7,8- tetrachlorodibenzo-p-dioxin induced testicular damage in guinea pigs", BJU Int, 83(7), pp.842-9. 10. Ranga A, Kalla NR, Kanwar U (1999), " Effect of gossypol on the fertility of male rats", Acta Eur Fertil, 21 (1), pp. 7-15. 11. Salvati G, Genovesi G, Marcellini L. (1996), "Effect of Panax Ginseng C.A. Meyer saponins on male fertility", Panminerva Med, 38(4), pp.249-54. effect of hippocampus and hippo-pinax ginseng on morphological structure of male rat's testes After taken hippocampus and hippo-panax ginseng with different doses for two weeks, microstructure of all the studied male rats' testes was observed as followed: 1. The normal structure of seminal epithelial and testes' interstitial gland was not changed by effect of hippocampus and hippo-panax ginseng. 2. There was no significant difference of seminal vesicles' average diameter among all the drug- taken groups. However, this diameter in all the drug- taken groups was significantly higher than that in the control group. 3. The percentage of the seminal vesicles, in which the sperm reproduction was completed, was significantly increased in all the drug-taken compared to that in the control group. 13 . TCNCYH 21 (1) - 2003 ảnh hởng của Hải m và Hải m -nhân sâm lên cấu trúc hình thái tinh hoàn chuột cống trắng Đậu Xuân Cảnh 1 , Trịnh Bình 2 ,. - Hải mã và Hải mã+ Nhân sâm không làm thay đổi cấu trúc bình thờng của biểu mô tinh và tuyến kẻ tinh hoàn. - Đờng kính trung bình của các ống sinh tinh